ОПЫТ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯТ-КЛЕТОЧНОЙ КЛОНАЛЬНОСТИ
- Авторы: Сидорова ЮВ1,2, Никитин ЕА1,2, Пекло М1,2, Власик ТН1,2, Самойлова РС1,2, Кравченко СК1,2, Меликян АЛ1,2, Виноградова ЮЕ1,2, Пивник АВ1,2, Судариков АБ1,2
-
Учреждения:
- ГНЦ РАМН
- Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
- Выпуск: Том 78, № 7 (2003)
- Страницы: 48-52
- Раздел: Передовая статья
- Статья получена: 13.04.2020
- Статья опубликована:
- URL: https://ter-arkhiv.ru/0040-3660/article/view/33363
- ID: 33363
Цитировать
Полный текст
Аннотация
и опухолевой важно подтвердить клональность Т-клеток. Классические методы гистологии
и иммунофенотипирования не позволяют оценить Т-клеточную клональность. Мы приводим
наш опыт определения Т-клеточной клональности по реаранжировкам у-цепи Т-клеточного
рецептора (TCRy).
Материалы и методы. Определение Т-клеточной клональности по реаранжировкам у-цепи
Т-клеточного рецептора проводилось при помощи полимеразной цепной реакции (ПЦР) с последующим
анализом конформационного полиморфизма одноцепочечных продуктов (SSCP).
Обследовали 20 здоровых (доноров), 28 больных с Т-клеточными опухолями и 26 с различными
не Т-клеточными опухолями и реактивными процессами.
Результаты. Выявляемость Т-клеточной клональности у больных с доказанными Т-клеточными
лимфомами составила 82% (23/28), при этом у всех здоровых (доноров) продемонстрирован
поликлональный характер реаранжировок TCRy. Чувствительность метода составила
2,5, 7 и 10% для костного мозга, селезенки и периферической крови соответственно.
Заключение. Метод ПЦР-SSCP для TCRy является хорошим дополнением к классическим цитологическим,
гистологическим и иммунофенотипическим методам в диагностике Т-клеточных
лимфатических опухолей.
Об авторах
Ю В Сидорова
ГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, МоскваГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
Е А Никитин
ГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, МоскваГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
М Пекло
ГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, МоскваГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
Т Н Власик
ГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, МоскваГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
Р С Самойлова
ГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, МоскваГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
С К Кравченко
ГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, МоскваГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
А Л Меликян
ГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, МоскваГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
Ю Е Виноградова
ГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, МоскваГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
А В Пивник
ГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, МоскваГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
А Б Судариков
ГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, МоскваГНЦ РАМН; Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
Список литературы
- Воробьев А. И., Кременецкая А. М., Харазшивили Д. Опухоли лимфатической системы. Гематол. и трансфузиол 2000; 3: 1-14.
- WHO. Classification of neoplasms of the hematopoietic amlymphoid tissues / Harris N. L., Jaffe E. S., Diebold J. et al Airlie House, Virginia 1997.
- Никитин E. А., Левина E. А., Судариков А. Б. Роль молекулярных методов в диагностике и мониторинге лимфопролиферативных заболеваний. Гематол. и трансфузиол 2001; 3: 19-26.
- Signoretti S., Murphy M., Cangi M. G. et al. Detection of clonal T-cell receptor у gene rearrangements in paraffm-embeddectissue by polymerase chain reaction and nonradioactive singlestrand conformational polymorphism analysis. Am. J. Pathol 1999; 154 (1): 67-75.
- Rezuke W. N., Abernathy E. C., Tsongalis G. J. Molecular diagnosis of B- and T-cell lymphomas: fundamental principles and clinical applications. Clin. Chem. 1997; 43 (10): 1814- 1823.
- Arber D. A. Molecular diagnostic approach to non-Hodgkin'slymphoma. J. Mol. Diagn. 2000; 2 (4): 178-190.
- Arber D. A., Braziel R. M., Bagg A., Bijwaard К. Е. Evaluation of T cell receptor testing in limphoid neoplasms. Results of a Multicenter study of 29 extracted DNA and paraffin-embedded samples. Ibid. 2001; 3 (4): 133-140.
- Cabras A. D., Kremer M., Schulz S. et al. Quality assessment in diagnostic molecular pathology: experience from a German- Austrian-Swiss multicenter trial. Virchows Arch. 2000; 437 (1): 46-51.
- Greiner Т. С. Advances in molecular hematopathology: T-cell receptor у and bcl-2 genes. Am. J. Pathol. 1999; 154 (1): 7- 10.
- Mainl M. K., Casorati G., Dellabona P. et al. T-cell clonality in immune responses. Immunol. Today 1999; 20 (6): 262-266.
- Callan M. F., Steven N., Krausa P. et al. Large clonal expansions of CD8+ T cells in acute infectious mononucleosis. Nat. Med. 1996; 2 (8): 906-911.
- Southern E. Detection of specific sequences among DNA fragments separated by gel electrophoresis. J. Mol. Biol. 1975; 98: 503-517.
- Langerok A. W., Wolvers-Tettero I. L. M., van Dongen J. J. M. Detection of T cell receptor beta (TCRB) gene rearrangement pattern in T-cell malignancies by Southern blot analysis. Leukemia 1999; 13: 965-974.
- Moreau E. J., Langerak A. W., van Gastel-Mol E. J. et al. Easy detection of all TCRG gene rearrangements by Southern blotanalysis: recommendations for optimal results. Ibid. 1620- 1626.
- Greiner T. C., Raffeld M., Lutz С. et al. Analysis of T-cell receptor-gamma gene rearrangements by denaturing gradient gelelectrophoresis of GC-clamped polymerase chain reaction products', correlation with tumor-specific sequences. Am. J. Pathol. 1995; 146: 46-55.
- Orita M., Iwahana H., Kanazawa H. et al. Detection of polymorphism by human DNA by gel electrophoresis as singlestrand conformation polymorphism. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1989; 86 (8): 209-214.
- Lynas C., Howe D. Simple, reliable detection of T cell clones by PCR-L1S-SSCP analysis of TCRy rearrangement. Mol. Cell. Probes 1998; 12: 41-48.
- Lefranc M.-P., Lefranc G. The T cell receptor facts book. London: Academic Press; 2001.
- Breit T. M., Wolvers-Tettero L. M., Hahlen K. et. al. Extensive junctional diversity of gamma delta T-cell receptors expressed by T-cell acute lymphoblastic leukemias: implications for the detection of minimal residual disease. Leukemia 1992; 6 (2): 169-170.
- Kneba M., Bolz I., Linke B. et al. Characterization of clonespecific rearrangement T-cell receptor gamma-chain genes in lymphomas and leukemias by the polymerase chain reaction and DNA sequencing. Blood 1994; 84 (2): 574-581.
- Theodorou I., Delfau Larue M. H., Bigorgne C. et al. Cutaneous T-cell infiltrates: analysis of T-cell receptor gamma gene rearrangement by polymerase chain reaction and denaturing gradient gel electrophoresis. Blood 1995; 86: 305-310.
- Dippel E., Assaf C., Hummel M. et al. Clonal T-cell receptor gamma-chain gene rearrangement by PCR-based GeneScan analysis in advanced cutaneous T-cell lymphoma: a critical evaluation. J. Pathol. 1999; 188: 146.
- Klemke С. D., Dippel E., Dembinski A. et al. Clonal T cell receptor gamma-chain gene rearrangement by PCR-based GeneScan analysis in the skin and blood of patients with parapsoriasis and early-stage mycosis fungoides. Ibid. 2002; 197 (3): 348-354.
- Theriault C., Galoin S., Valmary S. et al. PCR analysis of immunoglobulin Heavy chain (IgH) and TcR-gamma chain generearrangements in the diagnosis of lymphoproliferative disorders: Results of study of 525 cases. Mod. Pathol. 2000; 13 (12): 1269-1279.
- Miwa H., Nosaka Т., Kita K. et al. Immunogenotypes of lymphoid malignancies; the rearrangement of T cell receptor beta chain gene can occur before the gamma chain gene rearrangement. Jpn J. Cancer Res. 1988; 79 (4):484-490.
- Asou N., Matsuoka M., Hattori T. et al. T cell gamma gene rearrangements in hematologic neoplasms. Blood 1987; 69 (3): 968-970.
- Szczepanski Т., Langerak A. W., Wolvers-Tetero I. L. M. et al. Immunoglobulin and T cell receptor gene rearrangement pattern in acute lymphoblastic leukemia are less mature in adults than in children: implications for selection of PCR targets for detection of minimal residual disease. Leukemia 1998; 12: 1081-1088.
- Fodinger M., Winkler K., Mannhalter C., Chott A. Combined polymerase chain reaction approach for clonality detection in lymphoid neoplasms. Diagn. Mol. Pathol. 1999; 8 (2): 80-91.
- Wickham C. L., Lynas C., Ellard S. Detection of clonal T cell populations by high resolution PCR using fluorescently labelled nucleotides, evaluation using conventional LIS-SSCP. J. Clin. Mol. Pathol. 2000; 53: 150-154.
- Dippel E., Klemke D., Hummel M. et al. T-cell clonality of undetermined significance. Blood 2001; 98 (1): 247-248.
- Posnett D. N., Sinha R., Kabak S., Russo С. Clonal populations of T cells in normal elderly humans: the T cell equivalent to benign monoclonal gammapathy". J. Exp. Med. 1994; 179 (2): 609-618.