Адаптация меристемных растений земляники в условиях ex vitro с применением Эмистима

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

В статье представлены данные о влиянии элиситора Эмистим на процесс адаптации меристемных растений земляники садовой к нестерильным условиям. Объект изучения – микроразмноженные растения земляники шести промышленных сортов: Asia (NF 421), Darselect, Florence, Honeoye, Kimberly, Syria (NF 137). Использование раствора Эмистима на этапе высадки растений земляники in vitro в нестерильные условия позволило увеличить выход адаптированных растений по отдельным генотипам до 100%. Максимальный выход отмечали у сорта Florence при всех способах и сроках воздействия Эмистимом. В среднем по сортам биометрические показатели при всех способах обработки растений препаратом Эмистим превышали показатели контроля, сроки адаптации сокращались на 5–7 дн. Наибольшее количество листьев через 30 дн. адаптации сформировалось под действием Эмистима в течение 1 ч (6,4 ± 0,3). Длина корней через 30 дн. культивирования превышала контрольные показатели на 10–18%, 40 дн. – 15–25%. Оптимальным способом обработки растений можно считать замачивание базальной части розеток земляники в растворе Эмистима в течение 1 ч. Выявлена возможность усиления иммунитета растений земляники, полученных in vitro, на этапе адаптации к нестерильным условиям окружающей среды и при доращивании с помощью препарата нового поколения Эмистим, оказывающим положительное влияние на их рост и развитие. Результаты исследований позволяют рекомендовать данную технологию к использованию в системе массового производства качественного посадочного материала земляники.

Полный текст

Микроклональное размножение – одно из основных перспективных, экологически безопасных методов размножения растений. Данная технология представляет собой сложный многофакторный физиологический процесс, состоящий из принципиально разных этапов in vitro и ex vitro, включающий в себя с одной стороны морфогенез и регенерацию в условиях in vitro, с другой, структурно-функциональную адаптацию регенерантов в условиях ex vitro. [17]

Необходимое условие коммерческого использования технологии in vitro – успешная акклиматизация микроразмноженных растений. Правильная акклиматизация растений, выращенных in vitro, в условиях ex vitro гарантирует успешное завершение систем регенерации растительных тканей. [6] Акклиматизация требует соответствующей закалки и предварительной подготовки растений, выращенных in vitro, для повышения выживаемости в нестерильных условиях внешней среды. [16] После пересадки при ex vitro микроразмноженные растения подвергаются изменениям температуры, интенсивности света и условиям водного стресса. [11] Период акклиматизации критический у меристемных растений для восстановления нормальной фотосинтетической активности и метаболических функций. Во время этой фазы нормализуется устьичная регуляция, что способствует образованию новых листьев, с обычными анатомическими и физиологическими признаками, подходящими для выживания в естественных условиях окружающей среды. [18] Изменение условий культивирования на ex vitro вызывает адаптационные механизмы – ткани листа начинают расширяться и дифференцироваться, а количество и площадь устьиц уменьшаются. [14]

Важная проблема, связанная с получением качественных растений земляники, – повышение их выносливости при адаптации. [15] Во время акклиматизации уровень выживаемости микрорастений должен превышать 55%, чтобы обеспечить разумную рентабельность. [12] Для эффективного управления ростовой активностью сельскохозяйственных культур стали применять природные биорегуляторы, обладающие ростостимулирующим, иммуномоделирующим и антистрессовым действием. Регуляторы роста нового поколения оказывают тройное действие на растения: стимулируют физиологические процессы, повышают их устойчивость к биотическим и абиотическим стрессовым факторам окружающей среды и усиливают неспецифический иммунитет. [10, 13, 19] Их применение в сверхмалых гектарных нормах в садоводстве обеспечивает их низкую стоимость, сравнительную безопасность для человека и природной среды, возможность помогать растениям экологически естественным способом, усиливая их природную способность противостоять стрессам. Биостимуляторы могут содержать гуминовые и фульвокислоты, экстракты морских водорослей, полезные грибы, макро- и микроэлементы, а также аминокислоты, которые улучшают рост растений и повышают их урожайность, стимулируя биосинтез белка, активируя ферменты и облегчая усвоение макро- и микроэлементов. [20]

Препарат Эмистим относится к группе элиситоров – биорегуляторов роста и корнеобразования,

природный продукт метаболизма симбионтного гриба Acremonium lichenicola, выделенного из корней женьшеня, содержащего сбалансированную композицию из 75 физиологически активных веществ, в том числе фитогормонов цитокининовой, ауксиновой и гиббереллиновой природы, аминокислот, жирных кислот, углеводов, микроэлементов. [8]

Преимущество использования Эмистима заключается в его экологической безопасности, малых концентрациях рабочего раствора, индуцировании естественных механизмов устойчивости у растений к неблагоприятным факторам среды. [17]

Успешное применение Эмистима на жимолости и черной смородине, а также землянике открытого грунта путем опрыскивания вегетирующих растений было продемонстрировано в работах ученых. [3, 9] Эмистим во время пересадки микроразмноженных растений винограда из стерильных в условия ex vitro улучшал укоренение и выживаемость, уменьшал шок, сокращал фазы адаптации, увеличивал вегетативный рост, изменял морфологию корней и снижал гибель во время адаптации. [2] При микроразмножении земляники in vitro Эмистим добавляли в питательные среды на этапе ризогенеза. [1]

Современные иммуномодулирующие препараты перспективны, однако недостаточно разработаны элементы технологии при адаптации растений in vitro к условиям ex vitro.

Цель работы – изучить влияние иммуномодулятора Эмистим на процесс адаптации растений in vitro земляники к нестерильным условиям.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Работу выполняли в лаборатории ФГБНУ ВНИИСПК биотехнологическими методами в 2022–2024 годах. Объект исследования – микроразмноженные растения земляники шести промышленных сортов: Asia (NF 421), Darselect, Florence, Honeoye, Kimberly, Syria (NF 137). Исследования проводили в соответствии с методическими рекомендациями. [5, 7]

Схема опыта: 1. Замачивание высаживаемых микрорастений in vitro в растворе элиситора Эмистим в течение 1, 2 и 5 ч; 2. Полив почвенного субстрата раствором Эмистима перед высадкой растений. Контроль – растения без обработок Эмистимом. Концентрация рабочего раствора Эмистима – 0,001 мг/л. Обрабатывали биостимуляторами на фоне – дерновая земля: торф: перлит в соотношении 1:1:0,1.

Адаптация проходила по схеме: при 100% влажности воздуха – в течение 30 дн.; 70…80 – следующие 5 дн.; 60% – последние 5 дн.

Поливали субстрат водой на первых двух этапах только перед высадкой растений in vitro в грунт, исключая избыточное переувлажнение. Объем варианта – 20 микрорастений земляники каждого сорта.

Учеты биометрических показателей проводили в два этапа: через 30 дн. при 100%-й влажности и через последующие 10 дн. при пониженной. Общий срок адаптации ex vitro – 40 дн.

Условия адаптации: температура – 23°C, фотопериод – 16/8 ч, освещенность – 3 тыс. люкс. Процент адаптированных растений регистрировали через 40 дн. после пересадки.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Выживаемость растений в нестерильных условиях во многом определяется их способностью к быстрому росту (табл. 1).

 

Таблица 1.

Влияние Эмистима на высоту микрорастений земляники, мм

Сорт

Срок адаптации, дн.

Способ и время обработки

контроль

замачивание

полив грунта

1 ч

2 ч

5 ч

Asia

30

39,8 ± 1,8

46,2 ± 2,3

46,3 ± 3,7

36,9 ± 2,7

46,0 ± 2,5

40

50,6 ± 3,8

67,1 ± 3,0

53,9 ± 3,7

53,1 ± 3,1

57,0 ± 3,0

Darselect

30

35,0 ± 2,1

49,9 ± 3,9

43,0 ± 3,1

35,9 ± 1,5

43,3 ± 3,0

40

43,3 ± 4,0

65,4 ± 4,9

56,5 ± 4,2

43,0 ± 3,0

64,0 ± 4,0

Florence

30

46,8 ± 2,8

43,0 ± 2,7

47,0 ± 2,5

46,7 ± 2,3

50,8 ± 3,1

40

57,3 ± 3,6

62,0 ± 3,2

61,5 ± 3,2

59,5 ± 2,9

62,4 ± 4,0

Honeoye

30

46,5 ± 2,7

46,4 ± 2,7

49,8 ± 2,7

48,0 ± 2,0

47,1 ± 3,0

40

58,3 ± 3,0

53,8 ± 3,0

59,6 ± 2,7

53,7 ± 2,2

60,9 ± 3,7

Kimberly

30

37,6 ± 2,4

54,4 ± 3,7

48,2 ± 2,6

45,5 ± 3,0

46,9 ± 3,8

40

47,6 ± 3,0

71,5 ± 5,0

64,8 ± 3,4

68,8 ± 3,6

58,3 ± 4,0

Siria

30

50,5 ± 3,8

53,8 ± 3,1

59,6 ± 2,7

53,7 ± 2,2

50,9 ± 3,7

40

58,0 ± 3,0

71,7 ± 3,4

50,1 ± 2,7

50,7 ± 3,2

65,2 ± 3,1

Среднее

30

42,7 ± 2,6

49,0 ± 3,1

49,0 ± 2,9

44,5 ± 2,3

47,5 ± 3,0

40

52,5 ± 3,4

65,3 ± 3,8

57,7 ± 3,3

54,8 ± 3,0

65,2 ± 3,6

 

При обработке Эмистимом высота микрорастений превышала контроль. В среднем по сортам максимальные параметры высоты через 40 дн. адаптации отмечали в варианте с Эмистимом в течение 1 ч и при поливе грунта раствором элиситора (рис. 1).

 

Рис. 1. Высота микрорастений сорта Kimberly через 30 дн. после обработки Эмистимом: а – контроль; б – замачивание на 1 ч; в – замачивание на 2 ч; г – замачивание на 5 ч; д – полив грунта.

 

Обработка Эмистимом способствовала более интенсивному росту корней, по сравнению с контролем (табл. 2).

 

Таблица 2.

Влияние Эмистима на длину корней, мм

Сорт

Срок адаптации, дн.

Способ и время обработки

контроль

замачивание

полив грунта

1 ч

2 ч

5 ч

Asia

30

71,8 ± 4,8

83,9 ± 3,4

78,8 ± 4,0

79,5 ± 3,0

74,6 ± 2,6

40

80,0 ± 4,4

98,1 ± 4,8

85,7 ± 5,1

90,6 ± 3,7

87,5 ± 3,8

Darselect

30

56,6 ± 3,1

64,4 ± 3,0

66,8 ± 2,5

68,7 ± 3,4

94,8 ± 4,6

40

58,0 ± 5,1

75,6 ± 3,6

77,9 ± 4,9

76,7 ± 3,4

109,0 ± 4,7

Florence

30

72,1 ± 5,5

59,0 ± 4,0

66,3 ± 3,3

68,3 ± 3,4

79,3 ± 3,2

40

76,4 ± 6,2

88,0 ± 3,1

86,7 ± 3,5

95,5 ± 3,7

97,6 ± 5,8

Honeoye

30

79,7 ± 3,0

69,5 ± 4,1

77,2 ± 3,7

73,3 ± 3,1

81,9 ± 3,7

40

89,4 ± 2,8

91,5 ± 3,8

101,3 ± 3,1

90,9 ± 2,5

91,5 ± 3,9

Kimberly

30

57,6 ± 4,1

71,5 ± 2,6

70,2 ± 4,0

67,9 ± 3,7

68,9 ± 3,5

40

73,8 ± 3,8

95,0 ± 4,1

81,1 ± 2,8

83,8 ± 4,5

79,5 ± 5,0

Siria

30

60,7 ± 4,0

89,8 ± 3,0

76,8 ± 3,1

80,6 ± 4,4

74,7 ± 3,3

40

80,6 ± 4,2

111,7 ± 4,2

98,5 ± 4,0

102,2 ± 4,6

100,3 ± 4,9

Среднее

30

66,5 ± 4,1

73,0 ± 3,0

72,7 ± 3,4

73,1 ± 3,5

78,3 ± 3,3

40

76,4 ± 4,4

93,4 ± 3,9

88,5 ± 3,9

90,0 ± 3,5

94,2 ± 4,2

 

Через 30 дн. адаптации разница с контролем составляла 10…18%, в конце адаптации – 15…25%. Развитие корневой системы, прежде всего образование корней второго порядка, при обработке Эмистимом шло гораздо активнее, что позволяет сократить сроки адаптации на 5…7 дн. (рис. 2).

 

Рис. 2. Состояние корневой системы растений сорта Kimberly через 30 дн. после обработки Эмистимом: а – контроль; б – замачивание на 1 ч; в – замачивание на 2 ч; г – замачивание на 5 ч; д – полив грунта.

 

На фоне более развитой корневой системы растения формировали большее количество листьев, по сравнению с контролем (табл. 3).

 

Таблица 3.

Влияние Эмистима на количество листьев адаптируемых растений земляники, шт./раст.

Сорт

Срок адаптации, дн.

Способ и время обработки

контроль

замачивание

полив грунта

1 ч

2 ч

5 ч

Asia

30

5,4 ± 0,2

7,2 ± 0,5

7,2 ± 0,4

6,2 ± 0,2

6,3 ± 0,3

40

5,8 ± 0,3

7,7 ± 0,4

7,6 ± 0,4

6,5 ± 0,2

6,6 ± 0,3

Darselect

30

4,8 ± 0,2

8,2 ± 0,5

6,8 ± 0,5

5,0 ± 0,2

5,3 ± 0,2

40

4,7 ± 0,1

7,6 ± 0,4

6,5 ± 0,3

5,0 ± 0,2

6,4 ± 0,2

Florence

30

5,4 ± 0,2

5,1 ± 0,2

5,4 ± 0,1

5,1 ± 0,1

5,4 ± 0,2

40

5,3 ± 0,2

6,0 ± 0,2

5,7 ± 0,2

5,9 ± 0,2

5,8 ± 0,2

Honeoye

30

5,8 ± 0,2

6,1 ± 0,2

6,2 ± 0,3

6,1 ± 0,2

6,9 ± 0,3

40

5,4 ± 0,2

6,3 ± 0,2

6,1 ± 0,2

5,8 ± 0,1

6,3 ± 0,2

Kimberly

30

4,9 ± 0,1

5,6 ± 0,2

5,2 ± 0,2

5,2 ± 0,2

5,9 ± 0,3

40

5,6 ± 0,3

6,1 ± 0,2

5,3 ± 0,2

5,7 ± 0,2

5,4 ± 0,2

Siria

30

5,6 ± 0,2

6,2 ± 0,3

6,3 ± 0,2

5,5 ± 0,2

5,7 ± 0,3

40

5,7 ± 0,2

6,3 ± 0,2

6,2 ± 0,1

6,0 ± 0,2

6,2 ± 0,3

Среднее

30

5,3 ± 0,2

6,4 ± 0,3

6,2 ± 0,4

5,5 ± 0,2

5,9 ± 0,3

40

5,4 ± 0,2

6,7 ± 0,3

6,2 ± 0,2

5,8 ± 0,2

6,2 ± 0,2

 

Максимальное количество листьев через 30 дн. адаптации сформировалось под действием Эмистима в течение 1 ч (6,4 ± 0,3). Последующее выращивание растений в условиях постепенного снижения влажности (через 40 дн. после высадки) также подтверждает эффективность использования Эмистима на этапе адаптации земляники.

Использование раствора Эмистима на этапе высадки растений in vitro в нестерильные условия позволило увеличить выход адаптированных растений по отдельным генотипам до 100% (табл. 4). Наибольший выход адаптированных растений отмечали у сорта Florence при всех способах и сроках воздействия Эмистимом.

 

Таблица 4.

Приживаемость микрорастений на этапе ex vitro, %

Сорт

Способ и время обработки

контроль

замачивание

полив грунта

1 ч

2 ч

5 ч

Asia

85,7

100,0

100,0

95,5

94,4

Darselect

80,0

100,0

92,6

88,2

93,8

Florence

91,7

100,0

100,0

100,0

100,0

Honeoye

88,2

95,5

92,0

96,3

90,7

Kimberly

83,2

100,0

95,5

97,0

100,0

Siria

90,5

95,8

96,2

100,0

92,9

Среднее

86,3

98,6

96,1

96,2

96,4

 

Выводы. В среднем по сортам приживаемость растений на этапе ex vitro при всех вариантах обработок Эмистимом была выше, чем в контроле, что подтверждает целесообразность его применения в системе производства посадочного материала земляники. Биометрические показатели при всех способах обработки растений препаратом Эмистим в среднем по сортам превышали показатели контроля, сроки адаптации сокращались на 5…7 дн. Оптимальным способом обработки растений можно считать замачивание базальной части розеток земляники в растворе Эмистима в течение 1 ч. Результаты исследований позволяют рекомендовать данную технологию к использованию в производстве качественного посадочного материала земляники.

×

Об авторах

Ольга Владимировна Мацнева

Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур

Автор, ответственный за переписку.
Email: macneva@orel.vniispk.ru
Россия, д. Жилина, Орловская область

Лариса Владимировна Ташматова

Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур

Email: macneva@orel.vniispk.ru

Кандидат сельскохозяйственных наук

Россия, д. Жилина, Орловская область

Татьяна Михайловна Хромова

Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур

Email: macneva@orel.vniispk.ru

Кандидат биологических наук

Россия, д. Жилина, Орловская область

Список литературы

  1. Белякова Л.В., Высоцкий В.А., Алексеенко Л.В. Применение элиситоров при клональном микроразмножении земляники // Плодоводство и ягодоводство России. 2011. Т. 26. С. 194-200.
  2. Дорошенко Н.П., Пузырнова В.Г., Трошин Л.П. Усовершенствование технологии клонального микроразмножения винограда // «Магарач». Виноградарство и виноделие. 2022. Т. 24 (2). С. 102–111. https://doi.org/10.35547/ IM.2022.46.55.001
  3. Жидехина Т.В. Результаты применения биорегуляторов роста циркон, эмистим и экост на ягодных культурах // Мат. VIII межд. Симп. «Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования». Москва, 22–26 июня 2009 г. Т. 2. 2009. 547 с.
  4. Каширская Н.Я., Цуканова Е.М., Кочкина А.М. Применение препаратов из группы иммуно- и росторегуляторов в защите яблони от парши // Плодоводство и ягодоводство России. 2017. Т. 48 (2). С. 144–147.
  5. Кухарчик Н.В., Кастрицкая М.С., Семенас С.Э., и др. Размножение плодовых растений в культуре in vitro / Под общ. ред. Н.В. Кухарчик. Минск: Беларуская навука. 2016. 208 с.
  6. Мацнева О.В., Ташматова Л.В. Клональное микроразмножение земляники – перспективный метод современного питомниководства (обзор) // Современное садоводство. 2019. № 4. С. 113–119. https://doi.org/ 10.24411/2312-6701-2019-10411
  7. Мацнева О.В., Ташматова Л.В., Хромова Т.М. Биотехнологические приемы оптимизации микроклонального размножения и адаптации генотипов земляники садовой (Fragaria × ananassa Duch.) (методические рекомендации). Орел. ВНИИСПК. 2021. 24 с.
  8. Прусакова Л.Д., Малеванная Н.Н., Белопухов С.Н., Вакуленко В.В. Регуляторы роста растений с антистрессовыми и иммунопротекторными свойствами // Агрохимия. 2005. № 11. С. 76–86.
  9. Хапова С.А., Мальцев Д.Е. Эффективное использование регуляторов роста при культивировании ремонтантных и обычных сортов земляники в Ярославской области // Плодоводство и ягодоводство России. 2012. Т. 30. С. 119–128.
  10. Bulgari R., Franzoni G., Ferrante A. Biostimulants Application in Horticultural Cropsunder Abiotic Stress Conditions // Agronomy. 2019. Vol. 9. P. 306. https://doi.org/10.3390/agronomy9060306 www.mdpi.com/journal/agronomy
  11. Dewir Y.H., Al-Ali A.M., Al-Obeed R.S. et al. Biological Acclimatization of Micropropagated Al-Taif Rose (Rosa damascena f. trigintipetala (Diek) R. Keller) Plants Using Arbuscular Mycorrhizal Fungi Rhizophagus fasciculatus // Horticulturae. 2024. Vol. 10. P. 1120. https://doi.org/10.3390/horticulturae10101120
  12. El Bakouri Z. E., Meziani R., Mazri M.A. et al. Production cost of tissue cultured date palm cv. Mejhoul in Morocco: a 10-year based agribusiness study// Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2023. Vol. 152. P. 405–416. https://doi.org/10.1007/s11240-022-02417-y
  13. Grzelak1 M., Pacholczak A., Nowakowska K. The effect of several growth regulators and biostimulants on biochemical and physiological changes in acclimation of micropropagated Echinacea purpurea Moench. ‘Raspberry Trufe’ // Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2024. Vol. 159. No. 22. P. 1–17. https://doi.org/10.1007/s11240-024-02869-4
  14. Krakhmaleva I.L., Molkanova O.I., Orlova N.D. et al. In Vitro Morpho-Anatomical and Regeneration Features of Cultivars of Actinidia kolomikta (Maxim.) Maxim. // Horticulturae. 2024. Vol. 10. P. 1335. https://doi.org/10.3390/horticulturae1012133
  15. Kumar D., Mahadev M., Sanjeev S. et al. Tissue Culture Approaches to Strawberries Improvement // Agryculture & Food: E-Newsletter. 2024. Vol. 06. I. 08. P. 362–368. https://www.researchgate.net/publication/384241244
  16. Mukherjee E., Gantait S. Strawberry biotechnology: A review on progress over past 10 years // Scientia Horticulturae. 2024. Vol. 4. No. 1. P. 113618. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2024.113618
  17. Samarskaya V.O., Malaeva E.V., Postnova M.V. Aspects of clonal micropropagation and conservation of plants in vitro // Natural Systems and Resources. 2019. Vol. 9. No. 3. PP. 13–22. https://doi.org/10.15688/nsr.jvolsu.2019.3.2
  18. Sharma N., Kumar N., James J. et al. Strategies for successful acclimatization and hardening of in vitro regenerated plants: Challenges and innovations in micropropagation techniques // Plant Science Today (Early Access). 2023. https://doi.org/10.14719/pst.2376
  19. Soppelsa S., Kelderer M., Casera C. et al. Foliar Applications of Biostimulants Promote Growth, Yield and Fruit Quality of Strawberry Plants Grown under Nutrient Limitation // Agronomy. 2019. Vol. 9. P. 483. https://doi.org/10.3390/agronomy9090483
  20. Zydlik P., Zydlik Z., Kafkas N.E. The Effect of the Foliar Application of Biostimulants in a Strawberry Field Plantation on the Yield and Quality of Fruit, and on the Content of Health-Beneficial Substances // Agronomy. 2024. Vol. 14. P. 1786. https://doi.org/10.3390/ agronomy1408178

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Высота микрорастений сорта Kimberly через 30 дн. после обработки Эмистимом: а – контроль; б – замачивание на 1 ч; в – замачивание на 2 ч; г – замачивание на 5 ч; д – полив грунта.

Скачать (83KB)
3. Рис. 2. Состояние корневой системы растений сорта Kimberly через 30 дн. после обработки Эмистимом: а – контроль; б – замачивание на 1 ч; в – замачивание на 2 ч; г – замачивание на 5 ч; д – полив грунта.

Скачать (74KB)

© Российская академия наук, 2025

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.