Клиническая эффективность переливаний концентратов тромбоцитов, подвергнутых инактивации патогенов


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Резюме. Цель исследования. Оценить влияние инактивации патогенов (ИП) в концентрате тромбоцитов (КТ) на посттрансфузионный прирост тромбоцитов, купирование геморрагического синдрома и интервал между трансфузиями. Материалы и методы. В проспективное исследование включили 29 больных гемобластозами (13 женщин, 16 мужчин) медиана возраста 38 лет (от 20 до 66 лет). ИП проводили фотодинамическим методом с использованием системы Intecept. Каждому пациенту произвели 2 переливания КТ: 1 трансфузию КТ, подвергнутых ИП, и 1 контрольную трансфузию. Анализировали посттрансфузионный прирост тромбоцитов через 1 ч и 1 сут после трансфузии КТ, динамику геморрагического синдрома и время до следующего переливания тромбоцитов. Результаты. ИП с использованием амотосалена и ультрафиолетового облучения сопровождалась снижением посттрансфузионного прироста количества тромбоцитов у реципиентов на 24% через 1 ч и 29% через 1 сут после переливания КТ, подвергнутых ИП, по сравнению с контрольными трансфузиями. Заключение. Клиническая эффективность трансфузий КТ, подвергнутых ИП, с использованием амотосалена сопоставима с необработанными КТ. Несмотря на снижение посттрансфузионного прироста количества тромбоцитов при использовании КТ, подвергнутых ПИ, это не приводило к достоверному увеличению частоты трансфузий.

Полный текст

Клиническая эффективность переливаний концентратов тромбоцитов, подвергнутых инактивации патогенов. - Резюме. Цель исследования. Оценить влияние инактивации патогенов (ИП) в концентрате тромбоцитов (КТ) на посттрансфузионный прирост тромбоцитов, купирование геморрагического синдрома и интервал между трансфузиями. Материалы и методы. В проспективное исследование включили 29 больных гемобластозами (13 женщин, 16 мужчин) медиана возраста 38 лет (от 20 до 66 лет). ИП проводили фотодинамическим методом с использованием системы Intecept. Каждому пациенту произвели 2 переливания КТ: 1 трансфузию КТ, подвергнутых ИП, и 1 контрольную трансфузию. Анализировали посттрансфузионный прирост тромбоцитов через 1 ч и 1 сут после трансфузии КТ, динамику геморрагического синдрома и время до следующего переливания тромбоцитов. Результаты. ИП с использованием амотосалена и ультрафиолетового облучения сопровождалась снижением посттрансфузионного прироста количества тромбоцитов у реципиентов на 24% через 1 ч и 29% через 1 сут после переливания КТ, подвергнутых ИП, по сравнению с контрольными трансфузиями. Заключение. Клиническая эффективность трансфузий КТ, подвергнутых ИП, с использованием амотосалена сопоставима с необработанными КТ. Несмотря на снижение посттрансфузионного прироста количества тромбоцитов при использовании КТ, подвергнутых ПИ, это не приводило к достоверному увеличению частоты трансфузий.
×

Об авторах

И М Накастоев

Гематологический научный центр Минздрава РФ, Москва

125167 Москва, Новый Зыковский пр-д, д. 4а

А Е Грачев

Гематологический научный центр Минздрава РФ, Москва

Email: gra4illo@mail.ru

Э Г Гемджян

Гематологический научный центр Минздрава РФ, Москва

Email: edstat@mail.ru

Н Н Цыба

Гематологический научный центр Минздрава РФ, Москва

В В Журавлев

Гематологический научный центр Минздрава РФ, Москва

Email: transf@bk.ru

А В Кречетова

Гематологический научный центр Минздрава РФ, Москва

Email: anna_md@list.ru

И С Кастрикина

Гематологический научный центр Минздрава РФ, Москва

Е А Ватагина

Гематологический научный центр Минздрава РФ, Москва

В В Рыжко

Гематологический научный центр Минздрава РФ, Москва

В М Городецкий

Гематологический научный центр Минздрава РФ, Москва

Список литературы

  1. Alter H.J. Pathogen reduction: a precautionary principle paradigm. Transfus Med Rev 2008; 22: 97-102.
  2. Klein H.G., Anderson D., Bernardi M.J. et al. Pathogen inactivation: making decisions about new technologies. Report of a consensus conference. Transfusion 2007; 47: 2338-2347.
  3. Погорелов В.М., Бескоровайнова В.Ю., Гемджян Э.Г. и др. Адаптация тромбоцитопоэза доноров к процедурам тромбоцитафереза. Гематол и трансфузиол 2012; 3: 71.
  4. Edwin R.M. Use of platelets in hospitals: factors that are driving up demand. NHS Blood and Transplant 2012; 8.
  5. Cobain T.J., Vamvakas E.C., Wells A., Titlestad K. A survey of the demographics of blood use. Transfusion Med 2007; 17 (1): 1-15.
  6. Гармаева Т.Ц., Куликов С.М., Карякин А.В. и др. Мониторирование факторов риска и индикаторов инфицированности вирусами гепатитов В и С гематологических больных. Гематол и трансфузиол 2006; 1: 23-27
  7. Vamvakas, E.C. Relative safety of pooled whole-blood-derived versus single-donor (apheresis) platelets in the United States: a systematic review of disparate risks. Transfusion 2009; 49: 2743-2758.
  8. Stramer S.L., Hollinger F.B., Katz L.M. et al. Emerging infectious disease agents and their potential threat to transfusion safety. Transfusion 2009; 49 (Suppl 2): 1S-236S.
  9. Ярмоненко С.П., Вайнсон А.А. Радиобиология человека и животных. М: Высшая школа 2004; 549.
  10. Corash L. Virus inactivation in cellular components. Vox Sang 1996; 70 (Suppl. 3): 9-16.
  11. McCullough J., Vesole D.H., Benjamin R.J. et al. Therapeutic efficacy and safety of platelets treated with a photochemical process for pathogen inactivation: the SPRINT Trial. Blood 2004; 104 (5): 1534-1541.
  12. Накастоев И.М., Грачев А.Е., Гемджян Э.Г. и др. Изменения функциональных характеристик тромбоцитов при проведении инактивации патогенов в концентратах тромбоцитов. Гематол и трансфузиол 2012; 5: 31-36
  13. Goodrich R.P., Yerram N.R., Tay G.B. et al. Selective inactivation of viruses in the presence of human platelets: UV sensitization of psoralen derivatives. Proc Natl Acad Sci USA 1994; 91 (12): 5552-5556.
  14. Snyder E., Raife T., Lin L. et al. Recovery and life span of 111indium-radiolabeled platelets treated with pathogen inactivation with amotosalen HCI (S-59) and ultraviolet A light. Transfusion 2004; 44: 1732-1740.
  15. Slichter S.J., Davis K., Enright H. Factors affecting posttransfusion platelet increments, platelet refractoriness, and platelet transfusion intervals in thrombocytopenic patients. Blood 2005; 105: 4106-4114.
  16. Heddle N.M., Cook R.J., Tinmouth A. et al. A randomized controlled trial comparing standard- and low-dose strategies for transfusion of platelets (SToP) to patients with thrombocytopenia. Blood 2009; 113: 1564-1573.
  17. Murphy S., Snyder E., Cable R. et al. Platelet dose consistency and its effect on the number of platelet transfusions for support of thrombocytopenia: an analysis of the SPRINT trial of platelets photochemically treated with amotosalen HCl and ultraviolet A light. Transfusion 2006; 46 (1): 24-33.
  18. Klein H.G., Anstee D.J. Mollison's Blood Transfusion in Clinical Medicine, 11th Edition. A revision of the 10th edition written by P.L. Mollison, C.P. Engelfriet and Marcela Contreras. Blackwell Publishing 2005: 623.
  19. McCullough J., Vesole D.H., Benjamin R.J. et al. Therapeutic efficacy and safety of platelets treated with a photochemical process for pathogen inactivation: the SPRINT Trial. Blood 2004; 104: 1534-1541.
  20. Chairman P.K. Guidelines for the use of platelet transfusions. Br J Haematol 2003; 122: 10-23.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО "Консилиум Медикум", 2013

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
 

Адрес издателя

  • 127055, г. Москва, Алабяна ул., 13, корп.1

Адрес редакции

  • 127055, г. Москва, Алабяна ул., 13, корп.1

По вопросам публикаций

  • +7 (926) 905-41-26
  • editor@ter-arkhiv.ru

По вопросам рекламы

  • +7 (495) 098-03-59

 

  


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах