HCV-ASSOCIATED CRYOGLOBULINEMIC VASCULITIS


Cite item

Full Text

Abstract

Aim. To analyze clinical and laboratory features of cryoglobulinemic vasculitis (CGEV) associated with HCV infection. Material and methods. We examined 61 patients with clinical manifestation of CGEV in 2006-2011. CGEV was associated with autoimmune diseases in 31 patients (51 %), with HCV infection in 21 patients (34,4 %), essential (idiopathic) cryoglobulinemia in 8 patients (13 %) and lymphoproliferative diseases in 1 patient (1,6 %). 21 patients with HCV-associated CGEV were studied for main clinical and laboratory manifestations of the disease. Kidney and liver involvement was confirmed morphologically and immunomorphologically. Electroneurophysiological investigation evaluated peripheral nervous system involvement. Biopsy of parotid, lacrimal glands, peripheral lymph nodes, splenectomy and bone marrow trephine biopsy with morphological study and immunohistochemistry were used to identify type of lymphoma. Characteristics of monoclonal secretion were assessed with high-resolution electrophoresis in agarose gel with subsequent immunofixation of sera and concentrated urine. Results. Liver involvement was detected in 66 % of patients with HCV-associated CGEV., 34% patients were chronic HCV carriers with persistently normal liver function tests. Common rheumatologic manifestations of HCV-associated CGEV were skin lesions (90%), arthralgia (85%), frequent peripheral nervous system involvement (52%) and glomerulonephritis (38%). Prevalent immunological markers of CGEV associated with HCV were mixed monoclonal cryoglobulinemia with rheumatoid factor activity (62%), rare polyclonal (34%) and olygoclonal (4%) cryoglobulinemia, low levels of С4 compliment fraction (80%). Patients with mixed monoclonal cryoglobulinemia often developed clinical manifestations of Sjögren s syndrome (23 %) and malignant lymphoproliferative diseases (14 %). CGEV is a prognostically adverse sign in HCV infected patients and caused death of 14% patients even in a short period of follow-up (1-2 years).

Full Text

АлАТ — аланинаминотрансфераза АНА — антинуклеарные антитела АсАТ — аспартатаминотрансфераза БШ — болезнь Шегрена ВГС — вирусный гепатит ГКС — глюкокортикостероиды ГН — гломерулонефрит ДПГН — диффузный пролиферативный гломерулонефрит ИГА — индекс гистологической активности КГ — криоглобулины КГВ — криоглобулинемический васкулит КГЕ — криоглобулинемия ЛПЗ — лимфопролиферативные заболевания ЛУ — лимфоузлы МКГН — мезангиокапиллярный гломерулонефрит МРТ — магнитно-резонансная томография ОК — олигоклональная КГЕ ПНП — периферическая полиневропатия ПНС — периферическая нервная система РА — ревматоидный артритом РФ — ревматоидный фактор СКВ — системная красная волчанка СКФ — скорость клубочковой фильтрации СМК — смешанный моноклональный СРБ — С-реактивный белок СШ — синдром Шегрена УЗИ — ультразвуковое исследование ЦНС — центральная нервная система ЦП — цирроз печени ЭКГВ — эссенциальный КГВ BJk — белок Бенс—Джонса к HCV — вирус гепатита С MZL — лимфома маргинальной зоны ПК — поликлональная КГЕ Криоглобулинемия (КГЕ) — состояние, характеризующееся циркуляцией в крови криоглобулинов (КГ), которые являются иммуноглобулинами (Ig), преципитирующими при температуре ниже 37°С с образованием нерастворимых иммунных комплексов [1]. В 1974 г. J. Brouet [2] предложил классификаСведения об авторах Пальшина Светлана Геннадьевна — аспирант НИИ РАМН, e-mail: vitalana@mail.ru Логвиненко Оксана Алексеевна — канд. мед. наук, ст. науч. сотр. лаб. интенсивных методов лечения ревматических болезней НИИ РАМН, e-mail: oksanalogv@yandex.ru Сафонова Татьяна Николаевна — канд. мед. наук, вед. науч. сотр. НИИ глазных болезней Родионова Екатерина Борисовна — канд. мед. наук, ст. науч. сотр. НИИ РАМН Варламова Елена Юрьевна — канд. мед. наук, зав. лаб. гуморального иммунитета ФДБУ ГНЦ Минздравсоцразвития России Некрасова Татьяна Петровна — канд. мед. наук, доц. патологической анатомии Первого МГМУ им. И. М. Сеченова Раденска-Лоповок Стефка Господиновна — д-р мед. наук, проф., зав. лаб. патоморфологии НИИР РАМН Пробатова Наталья Александровна — д-р мед. наук, проф., вед. науч. сотр. лаб. патоморфологии опухолей человека РОНЦ РАМН Александрова Елена Николаевна — д-р мед. наук, зав. лаб. иммунологии НИИР РАМН Насонов Евгений Львович — проф., д-р мед. наук, акад. РАМН, дир. НИИР РАМН цию КГ : I тип — моноклональные Ig одного подкласса, которые встречаются при лимфопролиферативных заболеваниях (ЛПЗ) и ассоциируются с гипервязким синдромом, ишемией конечностей, некрозами и синдромом Рейно; КГ II типа выявляются при смешанной моноклональной (СМК) КГЕ и состоят из поликлонального и моноклонального Ig, моноклональный компонент которого обладает активностью ревматоидного фактора — РФ (чаще это ^М); КГ III типа характерны для смешанной поликлональной (ПК) КГЕ и представлены смесью поликлональных Ig, относящихся к разным изотипам. При достаточной концентрации КГ в крови (для разных типов КГ она различна) КГЕ может приводить к развитию криоглобулинеми-ческого васкулита (КГВ). КГВ — системное заболевание, преимущественно поражающее сосуды малого и среднего калибра, которое индуцируется иммунными комплексами из препицитирующих Ig вследствие непрерывно поддерживающейся доброкачественной В-клеточной клональной пролиферации [3]. Основными клиническими проявлениями КГВ служат поражение кожи, суставов, нервной системы, почек, печени, легких с высокой частотой развития злокачественных ЛПЗ [4—6]. До начала 90-х годов XX века связь КГВ была установлена с ЛПЗ, аутоиммунными (болезнью Шегрена — БШ, системной красной волчанкой — СКВ, ревматоидным артритом — РА и др.), хроническими гепатобилиарными и реже — острыми инфекционными заболеваниями, однако оставалась большая группа Контактная информация: Васильев Владимир Иванович — д-р мед. наук, проф., вед. науч. сотр. лаб. интенсивных методов лечения ревматических болезней НИИР РАМН, тел.: 8-499-614-69-74 — 36 — Криоглобулинемический васкулит, ассоциированный с вирусом гепатита С больных с эссенциальным КГВ (ЭКГВ), не связанным с известными аутоиммунными болезнями и ЛПЗ [7—10]. С 90-х годов с момента широкого внедрения методов определения вируса гепатита С (HCV) обнаружили, что 50—90% больных с ЭКГВ имели маркеры HCV. Несмотря на более чем 50-летнюю историю изучения "эссенциальной" КГЕ, после первого описания M. J. Steinhard, G. S. Fisher [11] остается много нерешенных вопросов. Классическая триада симптомов (пурпура, астения, ар-тралгии), впервые описанная M. Meltzer, E. C. Franklin в 1966 г. [12] при "эссенциальной смешанной КГЕ", характеризует течение КГВ при аутоиммунных, лимфопролиферативных, хронических гепатобилиарных и других патологических состояниях. Маркеры HCV служат объяснением появления КГВ у больных с HCV-инфекцией, но не определяются у больных ЭКГВ и при КГВ, развивающемся в рамках аутоиммунных заболеваний и ЛПЗ. Отсутствием четких критериев постановки диагноза КГВ, определения типов СМК КГЕ до и после идентификации HCV-инфекции объясняются большие различия данных по частоте и характеру клинико-лабораторных проявлений КГВ при различных состояниях. Критерии диагностики КГВ, предложенные C. Ferri и соавт. [13], позволяют четко верифицировать диагноз и унифицировать подходы к диагностике. Настоящее исследование является первой работой в отечественной практике по оценке больных КГВ с признаками TCV-инфекции с использованием общепринятых международных стандартов лабораторных, клинических, радиоизотопных и морфологических методов исследования для верификации органных поражений при этом заболевании. Материалы и методы За период с сентября 2006 по декабрь 2010 г. КГВ выявлен у 61 больного. У 28 (45,9%) из них была БШ, у 21 (34,4%) — HCV-инфекция, у 8 (13,3%) — ЭКГВ, у 2 (3,2%) — СКВ, у одного (1,6%) — аутоиммунный гепатит, у одного (1,6%) — множественная миелома. Диагноз КГВ соответствовал критериям, предложенным C. Ferri и соавт. (табл. 1). В настоящее исследование включен 21 пациент с достоверным диагнозом КГВ и наличием маркеров HCV: анти-HCV (n = 21) и РНК HCV (n = 19). Средний возраст больных HCV-ассоциированным КГВ составил 50,1 ± 10,3 года. В этой группе было 19 женщин и 2 мужчин. Период наблюдения варьировал от 1 мес до 2,5 г. Медиана длительности КГВ (с момента возникновения первых клинических проявлений) составила 5 [1; 23] лет, а HCV-инфекции (с момента выявления маркеров анти-HCV и РНК HCV) — 6 [1; 15] лет. До включения в исследование 7 пациентов получали противовирусную терапию а-интерфероном с рибавирином или без него: 4 реальдерон или рофероном-А от 3 до 12 мес (2 по 2 курса), 3 — пегелированный а-интерферон (2 — пегасис, 1— пегИнтрон) от 3 мес до 1,5 года. При этом ни у одного пациента не был достигнут стойкий вирусологический ответ. У 7 больных проводилось лечение низкими или средними дозами глюкокортикостероидов (ГКС), некоторым из этих пациентов назначались цистостатики (лейкеран, циклофосфан) и в ряде случаев проводился плазмаферез. У одной больной проведена полихимиотера пия по схеме R-CHOP по поводу лимфомы; 6 пациентов до начала наблюдения лечение не получали. У 3 больных КГВ развился на фоне противовирусной терапии. У всех больных определяли КГ методом преципитации в капиллярах; антинуклеарные антитела (АНА) в непрямой реакции иммунофлюоресценции с использованием в качестве субстрата клеток человека HEp-2 ("ImmcoDiagnostics", США); антитела к SS-A/Ro и SS-В/Ьа методом иммуноферментного анализа с помощью коммерческого набора реагентов ("Orgentec Diagnostika", Германия); РФ, С-реактивный белок (СРБ), С3 и С4 иммунонефелометрическим методом на анализаторе BNProSpec ("Siemens", Германия); при этом для определения СРБ использовали высокочувствительный (вч) тест с латексным усилением (чувствительность 0,175 мг/л). Определяли содержание клеток CD19+ в периферической крови методом проточной цитометрии на анализаторе Cytomics FC 500 ("Beckman Coulter", США); проводили иммунохимическое исследования белков сыворотки и мочи (электрофорез белков в геле агарозы с денситометрией электрофореграмм, иммунофиксацией антисыворотками для измерения минимальных количества олигои моноклональных иммуноглобулинов, определение IgG, IgA, IgM техникой РИД и иммунонефелометрическим методом — IgM). Выполняли тест на HCV-инфекцию: определение РНК HCV с использованием комплекта реагентов "АмплиСенсТ HCV-FL" ("ФГУН ЦНИИЭ", Россия), генотипирование с помощью комплекта реагентов "АмплиСенсТ ^^Генотип^ЯХ" ("ФГУН ЦНИИЭ", Россия), определение вирусной нагрузки РНК HCV., используя тест-системы "АмплиСенсТ HBV-Монитор-FL" и "АмплиСенсТ HСV-Монитор-FL" ("ФГУН ЦНИИЭ", Россия). Всем больным проводили ультразвуковое исследование (УЗИ), рентгенологическое исследование, включая компьютерную томографию грудной и брюшной полостей, а также офтальмологическое и стоматологическое обследование для исключения или подтверждения синдрома Шегрена (СШ) или БШ. Поражение периферической (ПНС) и центральной (ЦНС) нервной системы подтверждали данными электронейрографии и магнитно-резонансной томографии головного мозга. У 14 больных выполнена биопсия печени c оценкой индекса гистологической активности (ИГА) гепатита по Knodell, стадии фиброза по Desmet, и 4 больным проводили ультразвуковую эластометрию печени для подтверждения цирроза. Степень тяжести цирроза печени (ЦП) оценивали по шкале Child — Turcotte — Pugh. Характер патологических изменений печени и почек оценивали гистологическим и имму-номорфологическим методами после чрескожной пункционной биопсии органов. При подозрении на лимфому выполняли морфологическое и иммуноморфологическое исследования биопта-тов, операционного материала и трепанобиоптатов. Результаты Виремия к моменту наблюдения выявлена у 19 больных. У одной пациентки с хроническим вирусным гепатитом (ВГС), подтвержденным гистологически (низкая активность c умеренным/выраженным фиброзом), РНК HCV к моменту обследования отсутствовала, однако ранее у нее определялась РНК HCV, Таблица 1 Классификация КГВ итальянской группы изучения КГЕ, дополненная С. Ferri и соавт. [1] Критерии Признаки лабораторные морфологические клинические Большие Смешанная КГЕ ± сниженная конценЛейкоцитокластический васкулит Пурпура трация С4 Малые Положительные тесты на РФ/HCV/HBV Клональные В-клеточные инфильтраты Хронический гепатит/МКГН/перифери(в печени/костном мозге) ческая полиневропатия/язвы на коже Достоверный диагноз КГВ ставится при наличии: а) всех 3 больших критериев; б) 1 большого лабораторного критерия + 2 малых клинических + 2 малых лабораторных или морфологических. Вероятный КГВ диагноз ставится при наличии: а) большого лабораторного критерия + 1 малый клинический + 1 лабораторный/ морфологический; б) 1 большого клинического/патологического критерия + 1 малый клинический + 1 лабораторный/морфологический; в) 2 малых клинических критерия + 1 малый клинический + 1 лабораторный/морфологический. Примечание. HBV — вирус гепатита В. — 37 — В. И. Васильев и соавт. Генотип HCV (л=19) 11% Рис. 1. Распределение генотипов HCV у больных HCVассоциированным КГВ. генотип 1b, в последующем при наблюдении вновь наблюдалась виремия. В одном случае генотип HCV не был определен. У 84,2% больных обнаружен генотип 1b HCV (рис. 1). При обследовании 18 больных КГВ с признаками поражения печени у 39% выявлен ЦП и еще у 5% — тяжелый фиброз печени (рис. 2). Практически у всех больных с ЦП (6 из 7) имелись гепатоспленомегалия, признаки портальной гипертензии, у 3 пациентов выявлялись варикозно расширенные вены пищевода (I—II степени). По шкале Child — Turcotte — Pugh чаще обнаруживался компенсированный А5 — 6 (n = 5), реже — субкомпен-сированный В7 — 8 (n = 2) ЦП. Слабо выраженный фиброз (F1), а также переходная стадия F1 — 2 наблюдались у 34% больных, в то время как умеренный фиброз (F2 — 3) — у 22%. При оценке активности гепатита по ИГА Knodell [42] и по уровню трансаминаз выделяли минимальную активность — повышение аланинаминотрансферазы (АлАТ) и аспартатамино-трансферазы (АсАТ) не более чем в 2 раза, низкую — в 2—5 раз, умеренную — более чем в 5, но не более чем в 10 раз по сравнению с нормой. Умеренная активность воспаления в печени по ИГА и уровню трансаминаз (АлАТ и АсАТ) наблюдалась в 15,4 и 9,5%, низкая — в 84,6 и 33,3%, минимальная — в 0 и 9,5% случаев соответственно. У 47,6% пациентов активность трансами-наз сохранялась в пределах нормы (рис. 3, табл. 2), т. е. мягкое течение ВГС с низкой воспалительной активностью по ИГА и уровню трансаминаз встречалось соответственно у 84,6 и 90,5% больных с КГВ. Следует отметить, что у 5 больных в течение многих лет болезни с момента выявления маркеров HCV уровень трансаминаз стойко оставался нормальным, несмотря на терапию высокими дозами циклофосфана и проведение курса полихимиотерапии по схеме R-CVP у одной больной. При этом у 2 пациентов, по данным биопсии печени, наблюдались слабо выраженный фиброз (F1) и низкая воспалительная активность (ИГА 6 баллов). Эти больные были включены в категорию хронических носителей HCV. У 4 из них выявлен генотип 1b HCV., у одной больной — 2а. Рис. 2. Распределение больных HCV-ассоциированным КГВ (n = 18) по стадиям фиброза (F) печени. Ill Умеренная активность Низкая активность [Щ Минимальная активность ЦЦ Норма Рис. 3. Активность гепатита по ИГА и уровню трансаминаз у больных HCV-ассоциированным КГВ. Типы КГЕ у больных КГВ. СМК КГЕ выявлена у 13 (61,9%) больных, ПК — у 7 (33,3%), олигоклональная (ОК) КГЕ (переходная между II и III типами) — у одного (4,8%). Состав моноклонального компонента у больных со СМК КГЕ был следующим: IgMK — у 8 (61,5%) больных, IgMK+BJK — у 2 (15,4%), IgMX — у одного (7,7%), белок Бенс-Джонса к (BJk) — у одного (7,7%), IgGX — у одного (7,7%). У 7 больных с СМК КГЕ уровень моноклональной секреции был следовым, а у 5 — низким (2,0—7,1 г/л). В 3 случаях наличие BJk было ассоциировано с тяжелым течением КГВ: у всех 3 больных имелись язвенно-некротический васкулит, гломерулонефрит (ГН) и полиневропатия. Клинико-лабораторная характеристика КГВ. Клиническая характеристика больных HCV-ассоциированным КГВ представлена в табл. 3. Наиболее частым проявлением КГВ служит поражение кожи и суставов (90,5 и 85,7% соответственно). Среди кожных проявлений КГВ при ВГС у 76,2% больных (рис. 4 см. на вклейке) преобладала пурпура (петехиальные высыпания в основном на нижних конечностях, усиливающиеся при физической нагрузке), однако встречались и язвенно-некротический васкулит (14,3%), эритематозные высыпания (9,5%) и генерализованное ливедо (9,5%). Эритема (n = 2) напоминала по внешнему виду подострую кожную волчанку (рис. 5 см. на вклейке), у одной больной с СШ она сопровождалась наличием антител к Ro. Пурпура чаще наблюдалась при ПК КГЕ, чем при СМК КГЕ (85,7 и 69,2% соответственно), но только при СМК КГЕ имелось язвенно-некротическое поражение кожи. Поражение суставов обычно было представлено артралгиями (85,7%), которые чаще возникали у больных СМК КГЕ (92,7%), чем при ПК (57,1%). Артрит (неэрозивный, чаще олигоартрит) отмечался у 52,4% с одинаковой частотой при СМК и ПК КГЕ. Энантема на слизистых оболочках была обнаружена только у больных со СМК КГЕ, из них у 2 имелся ЦП. Синдром Рейно встречался у 3 (14,3%) больных, при этом у 2 выявлялся антицентромерный характер свечения АНА, антицентромерные антитела (анти-CentrB) обнаруживались у одного пациента, антимитохондриальные антитела М2 отсутствовали у всех. Таблица 2 Активность трансаминаз при различных стадиях фиброза печени Стадия фиброза (F) Дан ных нет F1 F1—2 F2 F 2—3 F 3—4 ЦП (F4) Повышенные уровни АлАТ и АсАТ — — 2 2 1 1 5 Нормальные уровни АлАТ и АсАТ 3 3 1 1 — — 2 — 38 — Криоглобулинемический васкулит, ассоциированный с вирусом гепатита С Таблица 3 Клиническая характеристика больных HCV-ассоциированным КГВ Проявление Всего (n 21) Тип КГЕ II: СМК (n = 13) III: СПК (n = 7) ОК (n = 1) Возраст, годы (медиана [25-й квартиль; 75-й квартиль]) 49 [28; 74] 49 [32; 62] 53 [28; 74] 48 Генотип 1b HCV 16 (84,2%) 11 (83,3%) 5 (83,3%) — Поражение кожи: 19 (90,5%) 11 (84,6%) (100%) 1 пурпура 16 (76,2%) 9 (69,2%) 6 (85,7%) 1 эритематозные высыпания 2 (9,5%) 1 (7,7%) 1 (14,3%) — язвенные поражения 3 (14,3%) 3 (23,1%) — — ливедо 2 (9,5%) 1 (7,7 %) 1 (14,3%) — Поражение суставов: 18 (85,7%) 12 (92,3%) (71,4%) 1 артрит 11 (52,4) 7 (53,8%) (57,1%) — артралгии 17 (81%) 12 (92,3%) 4 (57,1%) 1 Синдром Рейно 3 (14,3%) 2 (15,4%) 1 (14,3%) — Энантема на слизистых оболочках 4 (19%) 4 (30,8%) — — Лихорадка 3 (14,3%) 3 (23,1%) — — Серозиты 3 (14,3%) 2 (15,4%) 1 (14,3%) — Лимфаденопатия 5 (23,8%) 5 (38,5%)* — — Поражение легких 4 (19%) 3 (23,1%)** 1 (14,3%) — БШЮШ 5 (23,8%):1/3 3 (23,1%):1/2 2 (26,6%):0/2 — ЛГИ >50 клеток 3 (14,3%) 1 (7,7%) 1 (14,3%) 1 Лимфомы 3 (14,3%) 3 (23,1%) — — Поражение нервной системы: 11 (52,4%) 8 (61,5%) 2 (28,6%) 1 ПНС 10 (47,6%) 7 (53,8%) 2 (28,6%) 1 ЦНС 1 (4,8%) 1 (7,7%) — — ГН 8 (38,1%) 6 (46,2%) 1 (14,3%) 1 Примечание. ЛГИ — лимфогистиоцитарный инфильтрат > 50 клеток в фокусе в биоптате малой слюнной железы. Серозиты выявлены у 3 больных, у 2 из них был субкомпенсированный ЦП в сочетании с ГН в одном случае и лимфомой в другом. У 4 пациентов имелось поражение легких: у 2 — в виде диффузного пневмосклероза, у одного — в виде формирующихся фиброзно-интер-стиальных изменений и еще у одной пациентки массивная легочная перибронхиальная инфильтрация была обусловлена поражением легких при генерализованной В-клеточной MALT-лимфоме слюнных, слезных желез, лимфома маргинальной зоны (MZL) лимфоузлов (ЛУ) и костного мозга (рис. 6 см. на вклейке). БШ выявлена у одного и СШ — у 4 пациентов. Их частота не различалась при СМК и ПК КГЕ. Неспецифический сиалоаденит (более одного фокуса лимфоидной инфильтрации площадью 4 мм2 малой слюнной железы) по биопсии выявлен в 3 случаях. Лимфомы диагностированы у 3 (14,3%) пациентов, все В-клеточные MZL ЛУ. При этом у 2 были MALT-лимфомы слюнных и слезных желез с поражением регионарных ЛУ (в одном случае с поражением ЛУ средостения, легких и костного мозга), в другом — MZL забрюшин-ных ЛУ и селезенки (рис. 6 см. на вклейке). Периферическая полиневропатия (ПНП) диагностирована в 10 (47,6%) случаях: в 3 (14,3%) — сенсорная и в 7 (33,3%) — сенсорномоторная. При ЭКГВ у 57% больных выявлен аксональный тип ПНП, у 43% — аксонально-демиелинизирующий и у одной больной — аксональная сенсорно-моторная полирадикуло-невропатия. В группе со СМК КГЕ незначительно преобладала сенсорно-моторная ПНП, однако только в этой группе выявлялась ПНП с признаками демиелинизации нервных клеток. У всех больных с ПНП длительность болезни была наибольшей, у всех имелись ГН, ЦП и низкий уровень фракции С4 комплемента. Поражение ЦНС наблюдалось у одной больной 32 лет. По данным магнитно-резонансной томографии (МРТ) у нее были выявлены признаки лакунарных инфарктов в белом веществе головного мозга. У 8 (38,1%) больных имелся ГН, гистологически верифицированный у 7. По морфологическим данным мезангиокапиллярный гломерулонефрит (МКГН) обнаружен у 5 пациентов, диффузный пролиферативный (ДПГН) сегментарный — у одного и тотальный — еще у одного. ДПГН был лишь у больных со СМК КГЕ. МКГН диагностирован у 3 больных со СМК КГЕ, у одного больного с ПК и у одного с ОК КГЕ. В одном случае СМК КГЕ по тяжести состояния биопсия почки не проводилась, больная имела нефротический и нефритический синдромы на фоне тяжелого ЦП с иммунодефицитом поликлональных IgG и IgA. У всех больных с ГН наблюдалась протеинурия (от 0,32 до 5,7 г/сут). Эритроцитурия встречалась у всех, кроме одной больной с ПК КГЕ и МКГН. Снижение скорости клубочковой фильтрации (СКФ) менее 51 мл/мин обнаружено в 5 случаях, в том числе у больных с ДПГН. В табл. 4 представлена лабораторная характеристика КГВ. У всех больных обнаружены КГ : у 85,7% уровень КГ составлял более +3, у 14,3% — +2. РФ выявлен в 90,5% случаев. Уровень комплемента, особенно фракции С4 был снижен у 80% пациентов, в то время как фракция С3 комплемента была снижена только у 20%. Снижение уровня фракции С4 сопровождалось клиническими проявлениями васкулита (от пурпуры до ГН и язв), однако у больных с лимфомами (n = 3) содержание фракций комплемента было нормальным. Титры АНА были повышены у 85,7% больных (n = 18). Анемия (гемоглобин < 110 г/л), выявленная у 9 (42,9% больных), в большинстве случаев была связана с хроническим воспалением, а в 1/3 — с ЦП и гиперспленизмом. Различий между СМК и ПК КГЕ не было. Лейкопения (< 4,0 ■ 109/л) определялась в 4 (19% случаев), в 2 из которых был ЦП с гиперспленизмом. Тромбоцитопения (< 150 ■ 109/л) встречалась у 5 (28,6%) больных: у 2 со СМК КГЕ и 3 с ПК КГЕ, у 4 из них был ЦП. Увеличение СОЭ > 20 мм/ч встречалось в 38,1% случаев, приблизительно с одинаковой частотой в обеих группах. Повышение уровня вч-СРБ > 10 мг/л выявлялось у 5 (29,4%) больных. Гипопротеинемия (< 65 г/л) и гипоальбуминемия (< 35 г/л) наблюдались у 9 (42,9%) пациентов и у 8 из них были связаны с активным ГН, а у одного — с ЦП. Повышение уровня фракций альбуминов а1 и а2 отмечено у всех больных с поражением почек. Гипогаммаглобулинемия обнаружена у 19% больных (все со СМК КГЕ) и являлась маркером развития тяжелых системных проявлений (100% поражение почек и ПНС, у 25% пациентов имелись лимфомы). Иммунодефицит поликлональных Ig определялся у 75% больных с гипогаммаглобулинемией. За время наблюдения умерли 3 пациентки: первая с ПК с ЦП — из-за дыхательной недостаточности вследствие легочного кровотечения на фоне геморрагического альвеолита, вторая — после биопсии почки из-за развившейся сердечно-сосудистой недостаточности (причина не была точно установлена), третья — от сердечно-сосудистой недостаточности на фоне прогрессирования печеночной недостаточности вследствие ЦП. Обсуждение Проведенное нами исследование показало, что КГВ у 50% больных связан с аутоиммунными заболеваниями, реже — с ЛПЗ, в 1/3 случаев ассоциирован с ^^инфекцией и только в 13% отмечается ЭКГВ без четкой связи с известными заболева— 39 — В. И. Васильев и соавт. Таблица 4 Лабораторная характеристика больных HCV-ассоциированным КГВ Всего (n = 21) Тип КГЕ Показатель II: СМК (n = 13) III: СПК (n=7) ОК (n = 1) Повышение уровня АлАТ или АсАТ 11 (52,4%) 6 (46,2%) 4 (57,1%) 1 Анемия < 110 г/л 9 (42,9%) 6 (46,2%) 3 (42,9%) — Лейкопения < 4,0 ■ 109/л 4 (19%) 2 (15,4%) 2 (28,6%) — Тромбоцитопения < 150 ■ 109/л 6 (28,6%) 2 (15,4%) 3 (42,9%) 1 СОЭ > 20 мм/ч 8 (38,1%) 5 (38,5%) 3 (42,9%) — Вч-СРБ > 10 мг/л (n = 18) 5 (29,4%) 4 (36,4%) из 11 1 (16,7%) из 6 — РФ > 15 МЕ/мл 19 (90,5%) 11 (84,6%) 7 (100%) 1 С3 < 0,5 г/л (n = 20) 4 (20%) 3 (25%) 1 (14,3%) — С4 < 0,1 г/л (n = 20) 16 (80%) 10 (83,3%) 5 (71,4%) 1 IgG < 95 МЕ/мл 4 (19%) 4 (30,8%) — — IgG > 235 МЕ/мл 1 (4,8%) — 1 (14,3%) — IgA < 55 МЕ/мл 2 (9,5%) 2 (15,4%) — — IgA > 250 МЕ/мл 2 (9,5%) — 2 (28,6%) — IgM > 405 МЕ/мл 9 (42,9%) 6 (46,2%) 2 (28,6%) 1 Антитела к Ro > 50 Ед/л 2 (9,5%) 1 (7,7%) 1 (14,3%) — Антитела к La > 50 ед./л — — — — АНФ на НЕР-2 > 1/160 13 (61,9%) 7 (53,8%) 5 (71,4%) 1 Гипопротеинемия < 65 г/л 9 (42,9%) 7 (53,8%) 1 (14,3%) 1 Гипоальбуминемия < 35 г/л 9 (42,9%) 7 (53,8%) 2 (28,6%) — Гипергаммаглобулинемия > 22% 9 (42,9%) 4 (30,8%) 5 (71,4%) — > 30% 2 (9,5%) 1 (7,7%) 1 (14,3%) — Гипогаммаглобулинемия < 13% 4 (19%) 4 (30,8%) — — Повышение а1и а2фракций 7 (33,3%) 7 (53,8%) — — Суточная протеинурия > 0,300 г 8 (38,1%) 6 (46,2%) 1 (14,3%) 1 Мочевой синдром 7 (33,3%) 6 (46,2%) — 1 4 СКФ < 70 мл/мин 5 (23,8%) 4 (30,8%) 1 (14,3%) — ниями. Полученные данные о нозологической принадлежности КГВ согласуются с результатами исследований, опубликованных в период начала изучения КГВ [2, 9, 11, 12], но отличаются от результатов, полученных в стационарах гастроэнтерологического профиля, где у 70—90% больных КГВ связан с HCV-инфекцией [4, 16—18]. Основные клинические проявления КГВ у больных с НС^инфекцией в нашей группе и в группах, которые наблюдали итальянские, французские и американские коллеги, были сходны [14—16] за счет использования общепринятых международных критериев, но существенно отличаются от тех изменений, которые наблюдали авторы [13], не применявшие четких критериев для верификации диагноза КГВ в отсутствие пурпуры. P. D. Goveric и соавт. [16] в 1980 г. обратили внимание на высокую частоту выявления гистологических признаков поражения печени у больных с КГВ, не связанным с ранее известными патологическими состояниями. При длительном наблюдении 40 больных с КГВ у 22 отмечались нарушения функции печени, часто субклинические, а при гистологическом исследовании наблюдались различные морфологические признаки от минимальных изменений до хронического активного гепатита и/или ЦП. У всех больных имелись пурпура, признаки васкулита, по данным исследования биоптатов кожи и более чем у 50% — клинические и гистологические признаки ГН, который может влиять на прогноз заболевания. Необходимо отметить, что многие клинические, лабораторные и гистологические проявления КГВ у наших больных идентичны изменениям, которые наблюдали у своих пациентов P. D. Goveric и соавт. [16], проводившие исследование до идентификации HCV-инфекции как этиологического маркера смешанной КГЕ без признаков аутоиммунных заболеваний и ЛПЗ. Поражение печени, подтвержденное результатами гистологических исследований, диагностировано у 66% больных, при этом у 1/3 верифицирован тяжелый ЦП. Низкая воспалительная активность гепатита, даже при наличии ЦП наблюдалась как при иммуногистохимическом исследовании биоптатов печени, так и при анализе ее функциональных нарушений. Следует отметить, что у 8 из 18 больных в американском исследовании [16] отсутствовали гистологические признаки, подтверждавшие гепатит, и только у 10 больных имелся хронический активный гепатит или ЦП. Авторы выявили слабую корреляцию между гистологическими находками и тяжестью клинических проявлений поражения печени. У 3 из 4 умерших больных с ЦП имелись СМК КГЕ и ГН, которые явились непосредственной причиной смерти. Одна больная с тяжелым ЦП умерла в нашем исследовании от сердечно-сосудистой недостаточности на фоне нарастания печеночной недостаточности. Существенные различия по частоте развития смешанной КГЕ II и III типа при КГВ [16] в этом исследовании по сравнению с нашими данными обусловлены использованием в настоящее время более современных методик выявления минимальных уровней моноклональных Ig и их легких цепей в сыворотке. По данным литературы, поражение печени наблюдается у 26—70% больных со смешанной КГЕ, при этом обнаруживается низкая воспалительная активность гепатита по результатам гистологического исследования биоптатов печени, несмотря на развитие ЦП у 20—43% больных [1—4, 13—16], что соответствует нашим наблюдениям. В то же время имеются сообщения о высокой воспалительной активности гепатита с HCV-ассоциированным КГВ [21]. При сравнении гистологических признаков поражения печени, уровней вирусной нагрузки, а также трансаминаз в группах со II и III типом КГЕ в нашем исследовании установлено, что у больных со СМК КГЕ превалировала низкая вирусная нагрузка, сохранялись нормальные уровни трансаминаз, реже встречался тяжелый ЦП по сравнению с группой больных с III типом КГЕ, однако небольшой размер анализируемых групп не позволяет высказать определенную точку зрения на полученные результаты. Необходимы дальнейшие наблюдения для подтверждения выявленных закономерностей. У носителей HCV со стойко нормальными уровнями трансаминаз (24%) выявлялась более высокая вирусная нагрузка и несколько чаще встречались СМК КГЕ и ГН, чем у больных с активным гепатитом. Как и в нашем исследовании, больные с HCV-инфекцией без признаков поражения печени составляют до 30—40% всех HCV-инфицированных [1—4], однако данные о вирусной нагрузке у пациентов этой категории в литературе отсутствуют. Большинство исследователей разделяют точку зрения об отсутствии влияния вирусной нагрузки на клинические проявления КГВ, ассоциированного с HCV-инфекцией [3, 4, 6, 13—15]. Изучение генотипа вирусной инфекции при HCV-ассоциированном КГВ выявило превалирование генотипа Ib у 84% больных в нашей серии, так же как и у больных с КГЕ в Германии [22]. Взаимосвязь генотипа 2а HCV с КГЕ выявлена в двух исследованиях из Италии [23, 24], однако не подтверждена в другом исследовании [25]. Возможно, определенные генотипы HCV отражают географическое распределение, а не взаимосвязи с КГВ [26]. Частота выявления II (62%) и III (38%) типов КГЕ у больных КГВ, ассоциированным с HCV-инфекцией, в нашем исследова— 40 — Криоглобулинемический васкулит, ассоциированный с вирусом гепатита С нии аналогична результатам, полученным различными исследовательскими группами [3, 4, 6, 13, 15, 20]. При КГВ могут обнаруживаться различные моноклональные Ig [2, 5, 9, 16], однако при КГВ, ассоциированном с HCV-инфекцией, выявляется преимущественно моноклональный IgMK и/или легкие цепи к моноклональных Ig в моче, обладающие активностью РФ [1—3]. Следует отметить, что в нашем исследовании при наличии IgMA, и IgGX в 2 случаях РФ в крови не определялся. Низкий уровень фракции С4 комплемента обнаружен в нашем исследовании у 80% больных КГВ, как и в других анализируемых группах больных. Высокая частота выявления этого лабораторного нарушения при HCV-ассоциированном КГВ послужила поводом для включения низкого уровня фракции С4 комплемента в критерии диагностики этого патологического процесса [1]. При СМК КГЕ значительно чаще обнаруживалось повышение острофазовых белков (СРБ, а1-, а2-глобулинов), уровня снижения фракций С3, С4 комплемента, дефицит поликлональных IgG и IgA с повышением IgM и развивалась тяжелая гипопротеинемия. У больных с III типом КГЕ наблюдалась чаще поликлональная гипергаммаглобулинемия за счет повышения уровней IgG и IgA и в 100% обнаруживался РФ. В проведенном нами ранее исследовании КГВ у больных БШ наблюдались сходные клинико-лабораторные проявления при II и III типах КГЕ [5]. У 6 (29%) больных выявлялась тромбоцитопения, из них у 3 были ЦП и спленомегалия, а тромбоцитопения носила смешанный характер и могла быть следствием гиперспленизма и синтеза антител к тромбоцитам [42]. Симптоматическую ксеростомию и ксерофтальмию описывали у 20—53% больных, инфицированных HCV [27, 28]; высокая частота развития сиалоаденита у этих пациентов отмечалась при изучении биоптатов малых слюнных желез [17], однако при сиалографическом исследовании отсутствовали признаки паренхиматозного паротита, характеризующие поражение слюнных желез при СШ [29]. БШ или СШ диагностированы у 5 больных, в 2 случаях наблюдался классический паренхиматозный паротит и в 4 — сухой кератоконъюнктивит. Неспецифический сиалоаденит малых слюнных желез без признаков СШ диагностирован у 3 (14%) больных. Участие HCV в развитии ЛПЗ широко обсуждается в литературе [30, 31] и оценивается неоднозначно. Хорошо установленным фактом является развитие ЛПЗ у больных со СМК КГЕ [5, 7, 32]. У 4—6% больных с HCV-инфекцией развиваются ЛПЗ и частота ее увеличивается до 10% у больных со СМК КГЕ [13]. В нашем исследовании у 3 (14%) больных из 21 с КГВ, ассоциированным с HCV-инфекцией, выявлена неходжкинская лим-фома. Как и P. D. Goveric и соавт. [16], мы обнаружили MALT-лимфомы слюнных и слезных желез одного пациента с БШ и одного с СШ при значительном увеличении слюнных и слезных желез. Возможно, наличие СШ у больных КГВ, ассоциированным с НС^инфекцией, может быть предиктором развития MALT-лимфом и для диагностики этого типа лимфопролифера-ции должна быть выполнена биопсия значительно увеличенных околоушных слюнных/слезных желез [33]. Неврологические осложнения у инфицированных HCV больных связаны с преимущественным поражением ПНС и крайне редко описываются случаи вовлечения ЦНС [34]. При обследовании больных с HCV-инфекцией клиническая симптоматика сенсорной или сенсорно-моторной периферической невропатии выявляется у 9% [35], а у больных с HCV-ассоциированным КГВ частота ее выявления увеличивается до 50—77% [13, 36]. У 10 (47%) пациентов в нашем исследовании выявлено поражение ПНС, превалировала аксональная сенсорно-моторная полиневропатия с признаками демиелинизации нервных волокон у 14% больных по данным электронейрофизиологического исследования. Поражение ЦНС диагностировано в одном случае на основании множественных лакунарных инфарктов, выявленных при МРТ, в белом веществе головного мозга. Аналогичные проявления описаны M. Casato и соавт. [37]. Поражение почек имелись у 38% наших больных, что согласуется с данными других авторов, которые наблюдали подобные изменения у 14—56% больных КГВ, ассоциированном с HCV-инфекцией [3, 13—16]. Такие нарушения являются третьим по частоте внепеченочным проявлением ВГС после пурпуры и поражения ПНС. При гистологическом исследовании МКГН превалировал в нашем исследовании и встречался у 24% больных с II и реже — III типом КГЕ, тогда как ДПГН наблюдался у 14% боль ных только со СМК КГЕ. МКГН с субэндотелиальными депозитами [38] встречается у 70—80% больных КГВ с поражением почек и четко связан с II типом КГЕ и моноклональным IgMK РФ [3]. Поражение легких развилось у 19% наших больных, что несколько больше, чем в других исследованиях, где клиникорентгенологические признаки патологии легких наблюдались у 2—12% пациентов [13, 16]. В ранней публикации [39] изменения легких при рентгенологическом исследовании обнаружены у 60% больных. Интерстициальные изменения в легких выявлены у 3 больных и у одного из них отмечалось появление пе-рибронхиальных инфильтратов вследствие развития генерализованной MZL (marginal zone B-cell lymphoma — В-клеточная лимфома маргинальной зоны) с поражением слюнных и слезных желез, ЛУ и легких. Тяжелый геморрагический альвеолит, сопровождавшийся легочным кровотечением и развитием респираторного дистресс-синдрома взрослых, явился причиной смерти одной больной в нашем исследовании. Возможность развития тяжелого геморрагического альвеолита у больных с HCV-ассоциированной инфекцией описывалась в отдельных случаях [40, 41]. Как правило, больные, поступавшие в клинику НИИР РАМН, получали неадекватную терапию, поэтому наблюдались тяжелые генерализованные варианты КГВ с поражением кожи, суставов, легких, почек, ПНС с развитием MZL. В некоторых случаях, генерализованный вариант КГВ был связан с использованием противовирусной терапии HCV-инфекции, что подтверждает ранние наблюдения о возможности развития КГВ на фоне противовирусной терапии [3, 4, 6]. Вопросы адекватной терапии КГВ, ассоциированного с HCV-инфекцией, подробно обсуждались в ранее опубликованных обзорах [6, 20, 43, 44].
×

About the authors

V I Vasiliev

Research Institute of Rheumatology of RAMS

S G Palshina

Research Institute of Rheumatology of RAMS

Email: vitalana@mail.ru

O A Logvinenko

Research Institute of Rheumatology of RAMS

Email: oksanalogv@yandex.ru

T N Safonova

Research Institute of Ophthalmology of RAMS

E B Rodionova

Research Institute of Rheumatology of RAMS

E J Varlamova

Hematological Research Center of RAMS

T P Nekrasova

I.M. Sechenov First Medical University

S G Radenska-Lopovok

Research Institute of Rheumatology of RAMS

N A Probatova

N.N. Blokhin Russian Cancer Research Center of RAMS

E N Alexandrova

Research Institute of Rheumatology of RAMS

Email: irramn@rambler.ru

E L Nasonov

Research Institute of Rheumatology of RAMS

Email: sokrat@irramn.ru

References

  1. Ferri C., Zignego A. L., Pileri S. A. Cryoglobulins. J. Clin. Pathol. 2002; 55: 4—13.
  2. Brouet J., Clauvel E., Danon F. et al. Biologic and clinical significance of cryoglobulins: a report of 86 cases. Am. J. Med. 1974; 57: 774—782.
  3. Galli M., Invernizzi F., Monti G. Cryoglobulinaemic vasculitis. In: Ball G. V., Bridges S. L., eds. Vasculitis. 2-nd ed. Oxford: Oxford University Press; 2008: 529—565.
  4. Lamprecht P., Gause A. Gross W. L. Cryoglobulinemic vasculitis. Arthr. and Rheum. 1999; 42 (12): 2507—2516.
  5. Васильев В. И., Пробатова Н. А., Варламова Е. Ю. и др. Прогностическое значение смешанной моноклональной криоглобулинемии при болезни Шегрена. Тер. арх.; 2004; 8: 61—68.
  6. Tedeschi A., Barate C., Minola E., Morra E. Cryoglobulinemia. Blood Rev. 2007; 21 (4): 183—200.
  7. Васильев В. И., Ходарев Н. В., Мач Э. С. и др. Криоглобулинемия при болезни Шегрена. Тер. арх. 1990; 5: 66—70.
  8. Константинова Н. А. Криоглобулины и патология. М.: Медицина; 1999.
  9. Levo Y. Cryoproteins, cryoimmunoglobulinemia and cryofibrinogenemia. Adv. Microcirc. 1982; 10: 73—94.
  10. Tzioufas A. G., Manussakis M. N., Costello M. et al. Cryoglobulinemia in autoimmune rheumatic diseases. Arthr. and Rheum. 1986; 29 (9): 1098—1104.
  11. Steinhardt M. J., Fisher G. S. Essential cryoglobulinemia. Ann. J. Int. Med. 1954; 65: 848—858.
  12. Meltzer M., Franclin E. C Cryoglobulinemia — a study of twenty-nine patients. I. IgG and IgM cryoglobulins and factors affecting cryoprecipitability. Am. J. Med. 1966; 40: 828—836.
  13. Ferri C., Sebastiani M., Giuggioli D. et al. Mixed cryoglobulinemia: Demographic, clinical, and serologic features and survival 231 patients. Semin. Arthr. Rheum. 2004; 33 (6): 355—377.
  14. Trejo O., Ramos-Casals M., Garsia-Carrasco M. et al. Cryoglobulinemia: study of etiologic factors and clinical and immunologic features in 443 patients from a single center. Medicine (Baltimore) 2001; 80: 252—262.
  15. Saadoun D., Aaron L., Resche-Rigon M. et al. Cryoglobulinaemic vasculitis in patients coinfected with HIV and hepatitis C virus. AIDS 2006; 20: 871—877.
  16. Goveric P. D., Kassab H. J., Levo Y. et al. Mixed cryoglobulinemia: clinical aspects and long-term follow-up of 40 patients. Am. J. Med. 1980; 69: 287—308.
  17. Pawlotsky J.-M., Roudot-Thoraval F., Simmonds P. et al. Extrahepatic immunologic manifestations in chronic hepatitis C virus serotypes. Ann. Intern. Med. 1995; 122: 169—173.
  18. McMurray R.W., Elbourne K. Hepatitis C virus infection and autoimmunity. Semin. Arthr. Rheum. 1997; 26: 689—701.
  19. Cacoub P., Poynard T., Ghillani P. et al. Extrahepatic manifestations of chronic hepatitis C. Arthr. and Rheum. 1999; 42(10): 2204—2212.
  20. Braun G. S., Horster S., Wagner K. S. et al. Cryoglobulinaemic vasculitis: classification and clinical and therapeutic aspects. Postgrad. Med. J. 2007; 83: 87—94.
  21. Kayali Z., Buckwold V. E., Zimmerman B. et al. Hepatitis C, cryoglobulinemia, and cirrhosis: a meta-analysis. Hepatology 2002; 31: 978—985.
  22. Weiner S. M., Berg T., Berthold H. et al. A clinical and virological study of hepatitis C virus-related cryoglobulinemia in Germany. J. Hepat. 1998; 29: 375—384.
  23. Zignego A. L., Ferri C., Giannini C. et al. Hepatitis C virus genotype analysis in patients with type II mixed cryoglobulinemia. Ann. Int. Med. 1996; 124: 31—34.
  24. Zehender G., De Maddalena C., Monti G. et al. HCV genotypes in bone marrow and peripheral blood mononuclear cells of patients with mixed cryoglobulinemia. Clin. Exp. Rheumatol. 1995; 13 (Suppl.): 87—90.
  25. Sinico R.A., Ribero M. L., Fornasieri A. et al. Hepatitis C virus genotype in patients with essential mixed cryoglobulinaemia. Quart. J. Med. 1995; 88: 805—810.
  26. Agnello V. The etiology and pathophysiology of mixed cryoglobulinemia secondary to hepatitis C virus infection. Springer Semin. Immunopathol. 1997; 19: 111—129.
  27. Saadoun D., Landau D. A., Calabrese L. H., Cacoub P. P. Hepatitis C-associated mixed cryoglobulinaemia: a crossroad between autoimmunity and lymphoproliferation. Rheumatology 2007; 46: 1234—1242.
  28. Ramos-Casals M., Loustaud-Ratti V., De Vita S. et al. Sjoegren syndrome associated with hepatitis C virus: a multicenter analysis of 137 cases. Medicine (Baltimore) 2005; 84: 81—89.
  29. Haddad J., Deny P., Munz-Gotheil C. et al. Lymphocytic sialadenitis of Sjoegren’s syndrome associated with chronic hepatitis C virus liver disease. Lancet 1992; 339: 321—323.
  30. Cторожаков Г. И., Никитин И. Г., Лепков С. В. и др. Хронический вирусный гепатит С и лимфопролиферативные заболевания. Клин. перспект. гастроэнтерол., гепатол. 2006; 3: 3—9.
  31. Luppi M., Longo G., Ferrari M. G. et al. Clinico-pathological characterization of hepatitis C virus-related B-cell non-Hodgkin’s lymphomas without symptomatic cryoglobulinemia. Ann. Oncol. 1998; 9: 495—498.
  32. Gorevic P. D., Frangione B. Mixed cryoglobulinemia cross-reactive idiotypes: implications for the relationship of MC to rheumatic and lymphoproliferative diseases. Semin. Hematol. 1991; 28: 79—94.
  33. Васильев В. И., Логвиненко О. А., Пробатова Н. А. и др. Роль биопсии околоушной слюнной железы в ранней диагностике лимфом при болезни Шегрена. Тер. арх. 2009; 6: 20—27.
  34. Cacoub P., Saadoun D., Limal N. et al. Hepatitis C virus infection and mixed cryoglobulinaemiavasculitis: a revive of neurological complications. AIDS 2005; 19 (Suppl. 3): 128—134.
  35. Сacoub P., Renou C., Rosenthal E. et al. Extrahepatic manifestations associated with hepatitis C virus infection. A prospective multicenter study of 321 patients. Medicine (Baltimore) 2000; 79: 47—56.
  36. Ferri C., La Givita L., Cirafisi C. et al. Peripheral neurepathy in mixed cryoglobulinemia: clinical and electrophysiologic investigations. J. Rheumatol. 1992; 19: 889—895.
  37. Cassato M., Saadoun D., Marchetti A. et al. Central nervous system involvement in hepatitis C virus cryoglobulinemiavasculitis: a multicenter case-control study using magnetic resonance imaging and neuropsychological tests. J. Rheumatol. 2005; 32: 484—488.
  38. Beddhu S., Bastacky S., Johnson J. P. The clinical and morphologic spectrum of renal cryoglobulinemia. Medicine (Baltimore) 2002; 81: 398—409.
  39. Bombardieri S., Paoletti P., Ferri C. et al. Lung involvement in essential mixed cryoglobulinemia. Am. J. Med. 1979; 66: 748—756.
  40. Ferri C., LaCivita L., Fazzi P. et al. Interstitial lung fibrosis and rheumatic disorders in patients with hepatic C virus infection. Br. J. Rheumatol. 1997; 36 (3): 360—365.
  41. Manganelli P., Salaffi F., Subiaco S. et al. Bronchoalveolar lavage in mixed cryoglobulinaemia associated with hepatitis C virus. Br. J. Rheumatol. 1996; 35 (10): 978—982.
  42. Подымова С. Д. Болезни печени. М.: Медицина; 2005. 60—65.
  43. Пальшина С. Г., Васильев В. И. Криоглобулинемический васкулит. Науч.-практ. ревматол. 2010; 4: 59—66.
  44. Pietrogrande M., De Vita S., Zignego A. et al. Recommendations for the management of mixed cryoglobulinemia syndrome in hepatitis C virus-infected patients. Review. Autoimmun. Rev. 2011; 1: 1—11.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2012 Consilium Medicum

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
 

Address of the Editorial Office:

  • Alabyan Street, 13/1, Moscow, 127055, Russian Federation

Correspondence address:

  • Alabyan Street, 13/1, Moscow, 127055, Russian Federation

Managing Editor:

  • Tel.: +7 (926) 905-41-26
  • E-mail: e.gorbacheva@ter-arkhiv.ru

 

© 2018-2021 "Consilium Medicum" Publishing house


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies