Влияние микрогравитации на кристаллизацию кардиотоксина из яда очковой кобры Naja naja

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Кардиотоксины, относящиеся к семейству трехпетельных токсинов, – основные компоненты яда кобр, проявляющие различные виды биологической активности, включая антимикробную и цитотоксическую, в отношении раковых клеток. Данные о минимальных структурных различиях индивидуальных токсинов необходимы для понимания молекулярных механизмов их действия. Такая информация может быть получена методом рентгеноструктурного анализа высокого разрешения. Исследованы влияние микрогравитации на кристаллическую упаковку и дифракционное качество кристаллов кардиотоксина кобры Naja naja. При кристаллизации на Международной космической станции получены кристаллы, позволяющие получить максимально высокое разрешение для структуры данного токсина. Белок кристаллизовался исключительно в гексагональной пространственной группе, тогда как больше половины кристаллов, полученных в лабораторных условиях, принадлежало к ромбической сингонии.

Об авторах

К. М. Дубова

Национальный исследовательский центр “Курчатовский институт”; Институт кристаллографии им. А.В. Шубникова ФНИЦ “Кристаллография и фотоника” РАН

Email: lera@crys.ras.ru
Россия, Москва; Россия, Москва

П. В. Дубовский

Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН

Email: lera@crys.ras.ru
Россия, Москва

Ю. Н. Уткин

Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН

Email: lera@crys.ras.ru
Россия, Москва

В. Р. Самыгина

Национальный исследовательский центр “Курчатовский институт”; Институт кристаллографии им. А.В. Шубникова ФНИЦ “Кристаллография и фотоника” РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: lera@crys.ras.ru
Россия, Москва; Россия, Москва

Список литературы

  1. Khalil A., Elesawy B.H., Ali T.M. et al. // Molecules. 2021. V. 26. P. 4941. https://doi.org/10.3390/molecules26164941
  2. Dubovskii P.V., Efremov R.G. // Expert Rev. Proteomics. 2018. V. 15. P. 873. https://doi.org/10.1080/14789450.2018.1537786
  3. Kalita B., Utkin Y.N., Mukherjee A.K. // Toxins (Basel). 2022. V. 14. P. 839. https://doi.org/10.3390/toxins14120839
  4. Joubert F.J. // Eur. J. Biochem. 1977. V. 74. P. 387. https://doi.org/10.1111/j.1432-1033.1977.tb11403.x
  5. Gayatri S., Gorai B., Sivaraman T. // Res. J. Pharm. Biol. Chem. Sci. 2016. V. 7. P. 936.
  6. Konshina A.G., Dubovskii P.V., Efremov R.G. // Curr. Protein Pept. Sci. 2012. V. 13 (6). P. 570.
  7. Дубовский П.В., Уткин Ю.Н. // Acta Naturae. 2014. Т. 6. № 3. С. 12.
  8. Chien K.Y., Chiang C.M., Hseu Y.C. // J. Biol. Chem. 1994. V. 269. P. 14473.
  9. Dubovskii P.V., Ignatova A.A., Alekseeva A.S. // Toxins. 2022. V. 15. P. 6. https://doi.org/10.3390/toxins15010006
  10. Dubovskii P.V., Dubova K.M., Bourenkov G. et al. // Toxins. 2022. V. 14. P. 149. https://doi.org/10.3390/toxins14020149
  11. Luna A., Meisel J., Hsu K. et al. // NPJ Microgravity. 2020. V. 6. P. 12. https://doi.org/10.1038/s41526-020-0102-3
  12. Shabalin I.G., Serov A.E., Skirgello O.E. et al. // Crystallography Reports. 2010. V. 55 P. 806. https://doi.org/10.1134/S1063774510050159
  13. Timofeev V., Samygina V. // Crystals. 2022. V. 13. P. 71. https://doi.org/10.3390/cryst13010071
  14. Esposito L., Sica F., Sorrentino G. et al. // Acta Cryst. D. 1998. V. 54. P. 386. https://doi.org/10.1107/s0907444997011992
  15. Dubova K.M., Sokolov A.V., Gorbunov N.P. et al. // Crystallography Reports. 2018. V. 63. P. 951. https://doi.org/10.1134/S1063774518060111
  16. Tanaka H., Inaka K., Sughiyama Sh. // J. Synchrotron Rad. 2004. V. 11. P. 45. https://doi.org/10.1107/S0909049503023446
  17. Takahashi S., Tsurumura T., Aritake K. et al. // Acta Cryst. F. 2010. V. 66. P. 846. https://doi.org/10.1107/S1744309110020828
  18. Boyko K.M., Timofeev V.I., Samygina V.R. et al. // Crystallography Reports. 2016. V. 61. № 5. P. 718. https://doi.org/10.1134/S1063774516050059
  19. Kabsch W. // Acta Cryst. D. 2010. V. 66. P. 133. https://doi.org/10.1107/S0907444909047374
  20. Evans P.R., Murshudov G.N. // Acta Cryst. D. 2013. V. 69. P. 1204. https://doi.org/10.1107/S0907444913000061
  21. Agirre J., Atanasova M., Bagdonas H. et al. // Acta. Cryst. D. 2023. V. 79. P. 449. https://doi.org/10.1107/ S2059798323003595
  22. Schrödinger L., DeLano W. 2020. PyMOL. http://www.pymol.org/pymol
  23. Chruszcz M., Potrzebowski W., Zimmerman M.D. et al. // Protein Sci. 2008. V. 17. P. 623. http://www.proteinscience.org/cgi/doi/ 10.1110/ps.073360508
  24. Shabalin I.G., Tikhonova T.V., Polyakov K.M. et al. // EMBL Annual. 2007. Rep. 2. P. 109.
  25. Eistrikh-Heller P.A., Rubinsky S.V., Samygina V.R. et al. // Crystallography Reports. 2021. V. 66. P. 777. https://doi.org/10.1134/S1063774521050059
  26. Inaka K., Takahashi S., Aritake K. et al. // Cryst. Growth Des. 2011. V. 11. P. 2107. https://doi.org/10.1021/cg101370v
  27. Rahman R.N., Ali M.S., Leow T.C. et al. // Gravitational and Space Biology. 2010. V. 23. P. 89.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2.

Скачать (181KB)
3.

Скачать (415KB)
4.


© Российская академия наук, 2023