Влияние плазменной обработки биомедицинских матриксов на адгезию нейрональных клеток

А. Азиева; Азиева А. М.; Т. Григорьев; Григорьев Т. Е.; Н. Шарикова; Шарикова Н. А.; К. Луканина; Луканина К. И.; Р. Камышинский; Камышинский Р. А.; Р. Шариков; Шариков Р. В.; А. Михуткин; Михуткин А. А.; Т. Пацаев; Пацаев Т. Д.; Д. Кириллова; Кириллова Д. А.; Е. Ястремский; Ястремский Е. В.; А. Васильев; Васильев А. Л.

doi:10.31857/S0023476123600210

Влияние плазменной обработки биомедицинских матриксов на адгезию нейрональных клеток

作者: Азиева А.¹, Григорьев Т.¹, Шарикова Н.¹, Луканина К.¹, Камышинский Р.¹^,2, Шариков Р.¹, Михуткин А.¹, Пацаев Т.¹, Кириллова Д.¹, Ястремский Е.¹^,2, Васильев А.¹^,2^,3
隶属关系:
1. Национальный исследовательский центр “Курчатовский институт”
2. Институт кристаллографии им. А.В. Шубникова ФНИЦ “Кристаллография и фотоника” РАН
3. Московский физико-технический институт
期: 卷 68, 编号 6 (2023)
页面: 983-989
栏目: КРИСТАЛЛОГРАФИЯ В БИОЛОГИИ И МЕДИЦИНЕ
URL: https://ter-arkhiv.ru/0023-4761/article/view/673322
DOI: https://doi.org/10.31857/S0023476123600210
EDN: https://elibrary.ru/JJWTPR
ID: 673322

如何引用文章

全文:

开放存取

##reader.subscriptionAccessGranted##
受限制的访问

订阅存取

详细
作者简介
参考
补充文件
统计

详细

Адгезивные свойства матриксов, преимущественно зависящие от химических и структурных особенностей их поверхности, играют важнейшую роль в тканевой инженерии. С помощью флуоресцентной и растровой электронной микроскопии в режиме окружающей среды исследована адгезия клеток диссоциированной нейрональной культуры на изотропных и анизотропных нетканых и губчатых матриксах из полилактида. Нейроны, полученные из головного мозга новорожденных мышей, демонстрировали улучшенную адгезию на матриксах всех типов после обработки плазмой, при этом наиболее выраженный эффект наблюдался на неориентированных матриксах.

参考

Suñol C., Babot Z., Fonfría E. et al. // Toxicol. In. Vitro. 2008. V. 22. P. 1350. https://doi.org/10.1016/j.tiv.2008.03.009
Ji C., Tang M., Johnson G.V. // Methods Cell Biol. 2017. V. 141. P. 229. https://doi.org/10.1016/bs.mcb.2017.06.011
Wellbourne-Wood J., Chatton J.Y. // ACS Chem. Neurosci. 2018. V. 9. P. 1975. https://doi.org/10.1021/acschemneuro.8b00098
Zhang Y., Venkateswaran S., Higuera G.A. et al. // Adv. Healthc. Mater. 2020. V. 9. № 4. P. 1901347. https://doi.org/10.1002/adhm.201901347
Huang W., Sunami Y., Kimura H., Zhang S. // Nanomaterials. 2018. V. 8. P. 519.
Giordano G.G., Thomson R.C., Ishaug S.L. et al. // J. Biomed. Mater. Res. 1997. V. 34. P. 87. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-4636(199701)34:1< 87::AID-JBM12>3.0.CO;2-M
Huang H.D., Xu J.Z., Fan Y. et al. // J. Phys. Chem. B. 2013. V. 117. P. 10641. https://doi.org/10.1021/jp4055796
Annunziata M., Nastri L., Cecoro G., Guida L. // Molecules. 2017. V. 22. P. 2214.
Okamura Y., Kabata K., Kinoshita M. et al. // Adv. Mater. 2009. V. 21. P. 4388. https://doi.org/10.1002/adma.200901035
Ястремский Е.В., Пацаев Т.Д., Михуткин А.А. и др. // Кристаллография. 2022. V. 67. № 3. С. 421. https://doi.org/10.31857/S0023476122030249
Morent R., De Geyter N., Desmet T. et al. // Plasma Processes Polym. 2011. V. 8. № P. 171. https://doi.org/10.1002/ppap.201000153
Asadian M., Chan K.V., Norouzi M. et al. // Nanomaterials. 2020. V. 10. P. 119.
Travnickova M., Kasalkova N.S., Sedlar A. et al. // Biomed. Mater. 2021. V. 16. № 2. P. 25016. https://doi.org/10.1088/1748-605X/abaf97
Yu X., Mengsteab P.Y., Narayanan G. et al. // Engineering. 2021. V. 7. № 2. P. 153. https://doi.org/10.1016/j.eng.2020.02.010
Santoro M., Shah S.R., Walker J.L., Mikos A.G. // Adv. Drug Deliv. Rev. 2016. V. 107. P. 206. https://doi.org/10.1016/j.addr.2016.04.019
Kudryavtseva V., Stankevich K., Gudima A. et al. // Mater. Des. 2017. V. 127. P. 261. https://doi.org/10.1016/j.matdes.2017.04.079
Kleiman R., Banker G., Steward O. // J. Neurosci. 1994. V. 14. № 3. P. 1130. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.14-03-01130.1994
Sokolov I., Azieva A., Burtsev M. // Biologically Inspired Cognitive Architectures (BICA) for Young Scientists. Springer, 2016. P. 241.
Kopaeva M.Y., Azieva A.M., Cherepov A.B. et al. // Patogenez. 2021. V. 19. № 1. P. 74.
Schindelin J., Arganda-Carreras I., Frise E. et al. // Nature Methods. 2012. V. 9. № 7. P. 676. https://doi.org/10.1038/nmeth.2019
Kudryavtseva V., Stankevich K., Gudima A. et al. // Mater. Des. 2017. V. 127. P. 261. https://doi.org/10.1016/j.matdes.2017.04.079
Poll H.U., Schladitz U., Schreiter S. // Surf. Coat. Technol. 2001. V. 142–144. P. 489. https://doi.org/10.1016/S0257-8972(01)01055-6
Ivanov V.B., Behnisch J., Hollander A. et al. // Surf. Interface Anal. 1996. V. 24. P. 257.
Jordá-Vilaplana A., Fombuena V., García-García D. et al. // Eur. Polym. J. 2014. V. 58. P. 23. https://doi.org/10.1016/j.eurpolymj.2014.06.002
Bolbasov E.N., Maryin P.V., Stankevich K.S. et al. // Colloids Surf. B. 2018. V. 162. P. 43. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2017.11.028
Yang L., Chen J., Guo Y., Zhang Z. // Appl. Surf. Sci. 2009. V. 255. № 8. P. 4446. https://doi.org/10.1016/j.apsusc.2008.11.048
Wang M., Favi P., Cheng X. et al. // Acta Biomater. 2016. V. 46. P. 256. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2016.09.030
Nakagawa M., Teraoka F., Fujimoto S. et al. // J. Biomed. Mater. Res. A. 2006. V. 77. P. 112. https://doi.org/10.1002/jbm.a.30521
Teraoka F., Nakagawa M., Hara M. // Dent. Mater. J. 2006. V. 25. P. 560. https://doi.org/10.4012/dmj.25.560