Impact of current approaches to laboratory screening of donated blood and its components on hepatitis B virus infection in patients with blood system diseases

Abstract

Aim. To evaluate the detection rate of markers for hepatitis B virus (HBV) in the blood samples taken from patients with blood system diseases, by applying the current approaches to examining donated blood and its components for markers of viral infections. Materials and methods. The investigation included blood samples from patients with blood system diseases (n=364) and donors (n=5,011). The results of laboratory screening of donated blood samples (n=13,081) were retrospectively analyzed. Commercial kits of reagents were used for immunochemical assay and polymerase chain reaction. Results. Patients with blood system diseases were recorded to have markers of active HBV infection in 12.6% of cases, anti-HBc in 31.3%, and anti-HBs in 37.6%. A retrospective analysis of the results of screening donated blood samples showed the presence of markers for active HBV infection in 0.28% of cases. A prospective examination of blood donors revealed markers of HBV infection in 4.83% of cases, including those of active forms in 0.54% and anti-HBc in 4.79%. The markers of active HBV infection in donors were only anti-HBc IgM in 0.42% of cases. The blood samples from donors with an anti-HBs titer of >200 mIU/ml contained anti-HBc IgM in 10.5%. Conclusion. In the last 5-7 years, the detection rate of markers of HBV infection in the blood samples of patients with blood system diseases have remained at a high level. Screening for decreed markers fails to identify people with inapparent infections among the donors. Even high anti-HBs concentrations in the donated blood may be a risk for HBV transmission by transfusion to a recipient.

Full Text

анти-HBc — суммарные антитела к ядерному антигену вируса гепатита В aнти-HBc-IgM — иммуноглобулины класса М к ядерному антигену вируса гепатита В анти-HBe — антитела к е-антигену вируса гепатита В анти-НВs — антитела к поверхностному антигену вируса гепатита В ВОЗ — Всемирная организация здравоохранения ГНЦ — Гематологический научный центр ЛПЗ — лимфопролиферативные заболевания МДС — миелодиспластический синдром ОЛ — острый лейкоз ПЦР — полимеразная цепная реакция ХМЛ — хронический миелолейкоз HBsAg — поверхностный антиген вируса гепатита В HBeAg — е-антиген вируса гепатита В HBV — вирусгепатитаВ NAT — Nucleic amplification techniques Больные с заболеваниями системы крови относятся к группе высокого риска заражения вирусными инфекциями с парентеральным механизмом передачи, в частности вирусным гепатитом В (HBV). В работе Т.Ц. Гармаевой [1] показано, что частота обнаружения положительных тестов на маркеры HBV у больных при госпитализации в гематологическое отделение составляла 16,6%, это в 2 раза и более выше, чем в популяции. По данным исследования, выполненного с 2004 по 2006 г., ведущим фактором инфицирования HBV больных гемобластозами и депрессиями кроветворения являлись гемотрансфузии [2]. Инфекционная безопасность гемокомпонентной терапии зависит, в частности, от качества лабораторного тестирования донорской крови [3]. Наиболее диагностически значимым маркером HBV является поверхностный антиген — HBsAg. Существенно повышает возможность выявления потенциально инфицированных доз крови применение генамплификационных методов диагностики — Nucleic amplification techniques (NAT) [4]. С 1997 г. дополнительно к тестированию на HBsAg в план обязательного обследования донорской крови многих стран начали вводить полимеразную цепную реакцию (ПЦР) как один из самых простых и удобных форматов NAT-анализа: в 1997 г. в Германии, в 1999 г. Японии, в 1998—2000 гг. США, Канаде, Австралии, в 2004 г. Испании, в 2007 г. Швейцарии, Тайланде и др. [5—7]. Определение у доноров ДНК HBV с 1999 г. стало обязательным в странах Евросоюза, а с 2005 г. рекомендовано Всемирной организацией здравоохранения (ВОЗ) [8]. Высокая аналитическая чувствительность ПЦР позволяет тестировать как индивидуальный образец, так и несколько образцов крови (от 6 до 24), объединенных в один мини-пул [9]. В государствах, где NAT-скрининг донорской крови является сложившейся практикой, вирусная безопасность гемотрансфузий достигла высокого уровня [10, 11]. После введения тестирования крови доноров на вирусные нуклеиновые кислоты остаточный риск инфицирования HBV снизился в США с 1 на 830 тыс. до 1 на 2 млн, в Швейцарии с 1 на 95 тыс. до 1 на 296 тыс., в Австралии с 1 на 483 тыс. до 1 на 1 млн донаций [12, 13]. В то же время в развивающихся странах Африканского континента этот показатель остается высоким — 1 на 19 608 донаций [13]. По данным отечественных авторов, остаточный риск инфицирования HBV в Российской Федерации составляет 1 на 19 637 донаций [14]. Лабораторная диагностика инфекции HBV у доноров крови в Российской Федерации осуществляется в соответствии с приказом № 364 от 14.09.2001 г. «Об утверждении Порядка медицинского обследования донора крови и ее компонентов». Декретированным маркером при скрининговых исследованиях сывороток крови доноров является HBsAg и с 2008 г. введено обязательное исследование NAT-методом на наличие ДНК HBV в мини-пулах образцов HBsAg-негативной плазмы для фракционирования [15]. Однако исключение HВsAg-позитивных доз крови не дает полной гарантии вирусной безопасности в отношении HBV. Анализ данных литературы указывает на недостаточность тестирования только на этот маркер для обеспечения безопасности компонентов донорской крови, поскольку в этом случае остаются не выявленными пять категорий лиц: в ранней фазе инфекции HBV (фаза «серонегативного окна»); в ранней фазе выздоровления (фаза «core-окна»); хронические носители HBV с низким титром HBsAg (более того, чувствительность метода может снижаться в присутствии aнти-HBs); с латентной инфекцией HBV (наличие ДНК HBV в ткани печени в отсутствие HBsAg, в крови обнаруживаются только «изолированные» анти-HBc); носители мутантного штамма HBV (который может возникать как естественным путем, так и после противовирусной терапии) [16—18]. Несмотря на высокую чувствительность и 100% специфичность ПЦР, анализ современных данных литературы позволяет заключить, что NAT-тестирование на ДНК HBV и ИФА-тестирование на HBsAg не обеспечивают в полной мере вирусную безопасность гемокомпонентов [18, 19]. Риск инфицирования HBV реципиента сохраняется. Для повышения безопасности необходимо выявление и других маркеров HBV. Наличие в крови любого из них, кроме изолированных aнти-HBs, указывает на инфицированность этим вирусом. Выявление aнти-HBs может свидетельствовать о ранее проведенной вакцинации. В последние годы активно обсуждается понятие скрытого вирусного гепатита В, при котором, по данным литературы, анти-НВs может являться единственным маркером HBV в крови в 35% случаев [20]. Для выявления инфицированных лиц и реконвалесцентов инфекции HBV может служить тестирование на антитела к ядерному антигену HBV (core-антигену) — aнти-НВс, так как эти антитела сохраняются в крови практически на протяжении всей жизни [16, 21]. Исследование донорской крови на этот маркер HBV применяют в США и в некоторых европейских странах (Германия, Франция) для дополнительного отбора доноров [22—24]. Однако нет рекомендаций ВОЗ для проведения тестирования на aнти-HBc в повседневной практике учреждений, заготавливающих донорскую кровь. Необходимость применения этого теста обусловлена распространенностью HBV в конкретном регионе и частотой новых случаев HBV-инфекции [25]. Некоторые исследователи считают, что положительный результат на aнти-HBc в отсутствие других маркеров HBV может быть следствием неспецифической реакции [26], поэтому для решения вопроса об использовании aнти-HBc-положительных доз крови в клинической практике проводят дополнительно тестирование на уровень анти-HBs. В настоящее время в качестве минимального протективного уровня этих антител у пациентов определена концентрация равная 10 мМЕ/мл [25]. Для доноров крови ситуация отличается. В Великобритании aнти-HBc-положительные дозы крови с титром aнти-HBs более 100 мМЕ/мл считают безопасными для клинического и производственного применения, а в Японии и Голландии, странах с умеренным и низким уровнем распространенности инфекции HBV, для тех же целей используют aнти-HBc-положительные дозы с титром aнти-HBs равным или превышающим 200 мМЕ/мл [27—29]. Цель работы — оценить частоту выявления маркеров HBV в образцах крови больных с заболеваниями системы крови с использованием современных подходов к обследованию доноров крови и ее компонентов на маркеры вирусных инфекций. Материалы и методы Пациенты. В исследование включили образцы крови 364 пациентов, проходивших лечение в клиниках ФГБУ «Гематологический научный центр» Министерства здравоохранения Российской Федерации (далее ГНЦ) в период с июля 2013 г. по октябрь 2014 г. Продолжительность 15 мес. Характеристика пациентов приведена в табл. 1. Таблица 1. Характеристика пациентов, включенных в исследование Примечание. ОЛ — острые лейкозы, ЛПЗ — лимфопролиферативные заболевания, МДС — миелодиспластический синдром, АА — апластическая анемия, прочие заболевания — болезнь Гоше, неуточненное накопление липидов, ИБС и др., ХМЛ — хронический миелолейкоз. Образцы крови тестировали на молекулярные (ДНК) и серологические (HBsAg, HBeAg, анти-НВс, анти-HBc-IgM, анти-HBe) маркеры HBV. Исследование проводили при госпитализации и во время проведения плановой терапии по клиническим показаниям. Доноры крови и ее компонентов. Проанализированы результаты лабораторного скрининга образцов крови доноров (n=13081) отделения заготовки крови и ее компонентов ГНЦ в период с января 2012 г. по декабрь 2013 г. (2 года). Результаты тестирования на HBsAg получены с помощью наборов реагентов HBsAg-ИФА-БЕСТ (комплект № 1) производства ООО «Вектор-Бест». На ДНК HBV дополнительно исследованы HBsAg-отрицательные образцы донорской крови (4736 из 13 047, или 36,3%) с использованием мультиплексной тест-системы Cobas Taqscreen MPX Test в мини-пулах из 6 образцов. В проспективное исследование, проведенное с марта 2014 г. по август 2014 г. (5 мес), включили 5011 образцов крови доноров. Все образцы донорской крови тестировали на HBsAg и суммарные анти-HBc. Негативные по HBsAg образцы анализировали на наличие ДНК HBV. Положительные по анти-HBc образцы исследовали на наличие анти-HBc-IgM и уровень aнти-HBs. Методы. В качестве клинического материала исследовали периферическую кровь. Для молекулярного анализа кровь отбирали в стерильную пластиковую пробирку с напылением калиевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты, для серологического исследования — в стерильную пластиковую пробирку с активатором свертывания крови. Молекулярный скрининг крови больных проводили в формате индивидуальных образцов. Для выделения ДНК HBV из 100 мкл плазмы больных использовали коммерческие наборы ДНК-сорб-В или Рибо-преп («ИнтерЛабСервис», Россия). Для амплификации ДНК HBV использовали наборы АмплиСенс HBV-FL» и АмплиСенс HBV-монитор-FL («ИнтерЛабСервис», Россия). Молекулярный скрининг крови доноров проводили с помощью автоматических анализаторов Cobas Ampliprep и Cobas Taqman («Roche», Швейцария) с использованием мультиплексной тест-системы Cobas Taqscreen MPX Test в мини-пулах из 6 образцов. cерологические маркеры HBV (HBsAg, HBeAg, aнти-HBs, анти-HBc, анти-HBc-IgM, анти-HBe) определяли методом иммунохемилюминесцентного анализа на аппарате Architect с использованием соответствующих тест-систем Architect («Abbott», США) и методом иммуноферментного анализа, используя коммерческие тест-системы отечественных и зарубежных производителей: «ВекторБест» (Россия), «ЭКОлаб» (Россия), «BioRad» (США). Для статистических расчетов критериев Пирсона (χ2) или точного критерия Фишера использовали пакет программ EPI5 версии 5.0. Статистически значимыми считали различия при р=0,05. Результаты Получен следующий состав маркеров HBV у 364 обследованных пациентов: анти-НВs — 195 (53,6%), анти-НВс — 114 (31,3%), анти-HBe — 63 (17,3%), ДНК HBV — 30 (8,2%), HBsAg — 26 (7,1%), анти-HBc-IgM — 23 (6,3%), HBeAg — 4 (1,1%). В некоторых образцах одновременно выявлялись 2 маркера HBV и более (табл. 2). Таблица 2. Состав маркеров HBV в образцах крови пациентов В 46 (12,6%) пробах зарегистрированы маркеры активной инфекции HBV — ДНК HBV, HBsAg, анти-HBc-IgM, HBeAg, но ни один из них не встречался изолированно: в 6 образцах определена ДНК HBV и анти-НВс, в 2 из них с анти-HBs; в двух — HBsAg и анти-НВс, причем в 1 — с анти-HBs. HBeAg наблюдали в сочетании с HBsAg, ДНК HBV, анти-НВс. В одном образце из четырех HBeAg-положительных антитела отсутствовали, что является лабораторным признаком первичного острого процесса. Анти-HBc-IgM в 5 (1,4%) из 23 случаев были единственным свидетельством активной инфекции, в 9 (2,5%) — в присутствии анти-НВs. У 114 (31,3%) из 364 пациентов обнаружены анти-HBc, причем в 27 (7,4%) образцах крови выявлены только анти-НВс, в 42 (11,5%) — в комбинации с анти-НВs. Изолированные анти-НВе у пациентов не отмечены. У 137 (37,6%) пациентов выявлены только анти-НВs. Для анализа сформированы 3 группы: 1-я — пациенты с наличием маркеров HBV в крови, 2-я — пациенты, у которых выявлены изолированные анти-HBs, 3-я — пациенты, в образцах крови которых отсутствовали лабораторные маркеры HBV (табл. 3). Таблица 3. Распределение пациентов по нозологическим формам в группах, сформированных в зависимости от наличия маркеров HBV Доли этих групп оказались сопоставимы (31,6, 37,6 и 30,8%; р>0,05) и между группами пациентов распределение по нозологическим формам не имело статистически значимых различий (р>0,05). Проанализирована трансфузионная терапия в каждой группе пациентов (табл. 4). Таблица 4. Трансфузионное обеспечение пациентов в группах, сформированных в зависимости от наличия маркеров HBV Из представленных данных следует, что пациенты всех 3 групп получали терапию компонентами донорской крови, причем их доли статистически значимо различались (р=0,001; χ2=13,33): около 60% в группе пациентов, в образцах крови которых выявлены любые маркеры HBV, в то время как в 3-й группе (в отсутствие маркеров HBV в крови) — менее 40%. Среднее количество трансфузий в 1-й и 2-й группах пациентов было одинаковым (19,0 и 19,8), а в 3-й — меньше (17,7). Доля лиц с высокой трансфузионной нагрузкой в 1-й группе составила 23,1%, а в 3-й — 9,3% (р=0,021; χ2=7,72). При анализе результатов лабораторного скрининга образцов крови доноров в период с января 2012 по декабрь 2013 г. выявлено 34 (0,26%) из 13 081 с наличием HBsAg. При дополнительном тестировании 36,3% образцов крови HBsAg-негативных доноров на наличие ДНК HBV методом ПЦР в наборах из 6 проб обнаружены 2 позитивных образца с низкой вирусной нагрузкой (<150 МЕ/мл). В проспективном исследовании, включающем тестирование донорской крови на наличие HBsAg, ДНК HBV и анти-НВс, в 4,83% (242 из 5011) образцов выявлены маркеры HBV (табл. 5). Таблица 5. Состав маркеров HBV в образцах крови доноров Декретированный маркер (HBsAg) выявлен в 2 из 5 образцов изолировано, в 3 — в сочетании с другими маркерами: aнти-HBc; ДНК HBV и aнти-HBc; aнти-HBc и aнти-HBc-IgM. Вирусная ДНК обнаружена в 2 (0,04%) случаях, причем в одном из них в сочетании с HBsAg и aнти-HBc, а в другом — только с анти-НВс. Анти-HBc определялся у 240 (4,79%) из 5011, в 22 случаях выявлены aнти-HBc-IgM. В анти-HBc-положительных образцах крови доноров исследовали титр aнти-HBs. Полученные результаты представлены в табл. 6. Таблица 6. Концентрация анти-HBs в анти-НBc-положительных образцах крови 240 доноров Анти-НВs в титре >200 мМЕ/мл выявлены в 124 (51,6%) из 240. Анти-HBc-IgM детектировали в 13 (10,5%) из 124 случаев при титре анти-НВs >200 мМЕ/мл, в 5 (11,1%) из 45 — с титром aнти-HBs <10 мМЕ/мл. Обсуждение Маркеры активной инфекции HBV у больных с заболеваниями системы крови зарегистрированы в 12,6% случаев. В предыдущей работе показано, что этот показатель в образцах крови аналогичной выборки пациентов составлял 19,9%, и это значительно превышает результаты, полученные в данном исследовании (р=0,02) [30]. У 31,3% пациентов были обнаружены анти-HBc, указывающие на инфицированность HBV. Эти антитела могут выявляться при хронической, латентной инфекции HBV или в фазе выздоровления и не могут быть следствием вакцинации. Анти-НВе обнаруживали всегда в комплексе с другими маркерами. Вероятно, для диагностики инфицированности HBV не представляют особого значения, а скорее важны для прогноза течения вирусного гепатита. Сероконверсия НВеAg является благоприятным признаком спонтанного излечения или успешной противовирусной терапии [31]. У 37,6% пациентов выявлены изолированные анти-НВs. Эти антитела могут быть свидетельством как вакцинации, так и скрытого гепатита В, поэтому вопрос о наличии инфекции HBV у таких пациентов в отсутствие данных о вакцинации остается открытым. С учетом того, что с 2001 г. проводили вакцинацию подростков 13 лет согласно новому календарю профилактических прививок, лица моложе 27 лет на момент проведения исследования могли быть вакцинированы, и эта группа составила 44 (12,1%) человека из 364, медиана возраста 21,7 года. Пациентов (n=93, или 25,5%) в возрасте от 27 до 73 лет (медиана 42,7 года) можно условно считать переболевшими вирусным гепатитом В или, согласно данным литературы, скрыто инфицированными HBV [20]. При сравнении частоты выявления изолированных анти-НВs (37,6%) в образцах крови больных с заболеваниями системы крови с результатами, полученными ранее (19,4%), отмечены статистически значимые различия (р<0,05) [30]. Это можно объяснить долей в данной группе, вероятно, вакцинированных пациентов (12,1%), поскольку при исключении этих лиц из анализа и сравнении распространенности изолированных анти-НВs в старшей возрастной группе (25,5%) результаты оказались сопоставимыми (р>0,05). Трансфузионный путь инфицирования HBV считается основным [2, 32], поэтому проанализирована трансфузионная терапия в каждой группе пациентов. Пациенты всех 3 групп получали терапию компонентами донорской крови. Согласно данным литературы, более 20 переливаний компонентов крови одному реципиенту расценивали как высокую трансфузионную нагрузку [33]. Доля лиц с высокой трансфузионной нагрузкой в 1-й группе более чем в 2 раза больше доли таких пациентов в 3-й группе (р=0,021; χ2=7,72). Данный факт подтверждает сложившееся мнение о ведущей роли трансфузионного фактора в передаче HBV. Высокая распространенность маркеров HBV в образцах крови пациентов с заболеваниями системы крови сохраняется в течение многих лет, что показано в проведенном исследовании (31,6%) и в предыдущих работах (37,2%) [30]. По данным литературы, маркеры HBV при использовании современных тест-систем могут быть определены в период от 15 дней до 6 мес в крови инфицированных лиц без патологии иммунной системы [34]. У пациентов с заболеваниями системы крови ослаблен иммунологический контроль, что может приводить к более позднему формированию иммунного ответа или его полному отсутствию. В исследовании выявлены 27 пациентов (период наблюдения от 1 мес до 4 лет 9 мес), у которых антитела к HBsAg выявлялись транзиторно. Поэтому с целью прослеживания возможной трансфузионной передачи HBV реципиентам с гематологическим анамнезом целесообразно увеличить временно́й интервал анализа данных обследования образцов крови доноров до 1,5 года. В связи с этим анализировали результаты лабораторного скрининга образцов крови доноров в период с января 2012 г. по декабрь 2013 г. У 36 (0,28%) из 13 081 доноров зафиксированы маркеры активной инфекции HBV, и эти компоненты крови не переливались пациентам ГНЦ. Доноры крови в этот период не обследованы на анти-НВс, наличие которых в образце крови может быть единственным маркером хронической инфекции HBV с низкой репликативной активностью вируса, так называемого скрытого гепатита В [22]. Инициировано проспективное исследование, включающее тестирование донорской крови не только на HBsAg и ДНК HBV, но и на наличие анти-НВс. В 4,83% образцов выявлены маркеры HBV. У доноров крови и ее компонентов aнти-HBc явился наиболее часто выявляемым маркером HBV, как и у пациентов ГНЦ (31,3%), и определялся в 4,79% случаев. В 21 случае маркерами активной инфекции HBV служили только aнти-HBc-IgM, что могло свидетельствовать о наличии процесса в скрытой форме, поскольку, согласно данным литературы, антитела к ядерному антигену HBV могут служить единственным признаком субклинической формы гепатита В [31]. В некоторых странах допускается применение aнти-HBc-положительных компонентов крови при наличии определенного уровня анти-HBs. Учитывая данные литературы, мы оценили распределение образцов крови анти-HBc-положительных доноров по 4 уровням концентрации aнти-HBs: отрицательные (<10 мМЕ/мл), 10—100 мМЕ/мл, 101—200 мМЕ/мл, >200 мМЕ/мл [25, 27—29]. Почти в 50% образцов крови доноров выявлены анти-НВs в титре >200 мМЕ/мл. При этом в 10,5% случаев в этих образцах выявлены и анти-HBc-IgM. Практически идентичная доля (11,1%) анти-HBc-IgM выявлена в образцах с титром aнти-HBs <10 мМЕ/мл. Следовательно, наличие защитного титра анти-HBs не может гарантировать потенциальную вирусную безопасность компонентов крови. Заключение В результате проведенного серологического и молекулярного скрининга маркеры HBV выявлены у 115 (31,6%) из 364 пациентов ГНЦ. В предыдущих работах показано, что частота обнаружения маркеров инфекции HBV в образцах крови аналогичной выборки пациентов составляла 37,2%. Следовательно, этот показатель за последние 5—7 лет не претерпел статистически значимых изменений и сохраняется на высоком уровне. У 1/3 пациентов отмечены изолированные анти-НВs, которые могут быть как свидетельством вакцинации, так и скрытого гепатита В (37,6%). При мониторинге серологических маркеров HBV у пациентов с заболеваниями системы крови в 27 (19,7%) из 137 случаев наблюдали транзиторную детекцию анти-НВs. Нельзя исключить вероятность наличия инфекции HBV и в 3-й группе, поскольку при скрытой форме гепатита маркеры HBV в крови могут отсутствовать. Одной из причин высокого уровня встречаемости маркеров HBV у пациентов гематологического стационара является то, что скрининг на декретированные маркеры, независимо от качества тест-систем и оборудования для лабораторной диагностики, не позволяет выявлять скрыто инфицированных лиц среди доноров. Результаты исследования подтверждают это. Установлено, что частота обнаружения маркеров HBV у доноров крови составила 4,83%, причем в 0,54% случаев выявлены маркеры активной инфекции. Основным маркером HBV у доноров крови служил анти-НВс (4,79%). Маркеры активной инфекции HBV с одинаковой частотой встречались как в aнти-HBs-негативных образцах (11,1%), так в образцах крови доноров с высоким титром антител (10,5%), что может указывать на потенциальный риск трансфузионной передачи HBV реципиенту даже при высокой концентрации защитных антител в крови донора. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
×

References

  1. Гармаева Т.Ц., Куликов С.М., Михайлова Е.А., Игла Р.Е., Шматова Т.Ф., Гемджян Э.Г., и др. Динамика инфицирования вирусами гепатитов В и С больных с заболеваниями системы крови. Гематология и трансфузиология. 2009;54(5):16-23.
  2. Гармаева Т.Ц. Вирусные гепатиты В и С у больных заболеваниями системы крови: Дисс. д-ра мед. наук. Москва; 2012. Ссылка активна на 30.05.2016. http://www.dissercat.com
  3. Hatu G, Brumboiu MI, Gorgan IN, Bocşan IS. Romanian blood donors screening: is it really necessary and/or mandatory? Rev Med ChirSoc Med Nat Iasi. 2013;117(3):741-746. Accessed May 30, 2016. Available at: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24502043
  4. Гармаева Т.Ц., Куликов С.М., Судариков А.Б., Филатов Ф.П., Михайлова Е.А., Городецкий В.М., Савченко В.Г. О необходимости использования методов генодиагностики для тестирования доноров крови, компонентов крови и реципиентов многочисленных гемотрансфузий. Гематология и трансфузиология. 2011;4:36-39.
  5. Margaritis AR, Brown SM, Seed CR, Kiely P, et al. Comparison of two automated nucleic acid testing systems for simultaneous detection of human immunodeficiency virus and hepatitis C virus RNA and hepatitis B virus DNA. Transfusion. 2007;47(10):1783-1793. https://doi.org/10.1111/j.1537-2995.2007.01343.x
  6. Reesink HW, Engelfriet CP, Henn G, et al. Occult hepatitis B infection in blood donors. Vox Sang. 2008;94(2):153-166. https://doi.org/10.1111/j.1423-0410.2008.01017.x
  7. Slotz M, Tinguely C, Graziani M, et al. Efficacy of individual nucleic acid amplification testing in reducing the risk of transfusion-transmitted hepatitis B virus infection in Switzerland, a low endemic region. Transfusion. 2010;50(12):2695-2706. https://doi.org/10.1111/j.1537-2995.2010.02732.x
  8. Белякова В.В. Совершенствование лабораторного тестирования для обеспечения вирусной безопасности аллогенных гемокомпонентов: Дисс. канд. биол. наук. Москва; 2014. Ссылка активна на 30.05.2016. http://www.dissercat.com
  9. Богословская Е.В., Цыганкова Г.М., Шипулин Г.А. Скрининг донорской крови с помощью молекулярно-генетических методов ФГУН «Центральный НИИ эпидемиологии» Роспотребнадзора. Москва, Лабораторная медицина. 2008;9. Ссылка активна на 30.05.2016. http://md2007.org/ru/programm.pdf
  10. Филатов Ф.П. Вирусная безопасность переливания крови. Природа. 2005;3. Ссылка активна на 30.05.2016. http://vivovoco.astronet.ru/VV/JOURNAL/NATURE/03_05/VIRUS.HTM
  11. Жибурт Е.Б., Шестаков Е.А., Коденев А.Т. и др. Новое в трансфузиологии (на Х1Х региональном конгрессе международного общества переливания крови). Трансфузиология. 2009;3-4:64-91.
  12. Stramer SL, Wend U, Candotti D, Foster G.A, Hollinger FB, Dodd RY, et al. Nucleic acid testing to detect HBV infection in blood donors. N Engl J Med. 2011;364:236-247. https://doi.org/10.1056/NEJMoa1007644
  13. Kupek E. Residual risk of hepatitis-B-infected blood donations: estimation methods and perspectives. Review article. ISRN Infectious Diseases. 2013:15. https://doi.org/10.5402/2013/839896
  14. Губанова М.Н., Мадзаев С.Р., Аветисян К.С., Бахметьев А.В., Буркитбаев Ж.К., Зарубин М.В., Караваев А.В., Клюева Е.А., Коденев А.В., Кузнецов К.В., Максимов А.Р., Скорикова С.В., Султанбаев У.С., Филина Н.Г., Хальзов К.В., Яковлева Л.М., Жибурт Е.Б. Расчетный остаточный риск инфицирования при трансфузии. Инфекции в трансфузиологии и трансплантологии. Молекулярная диагностика. 2014;1. Ссылка активна на 30.05.2016. http://cyberleninka.ru/article/n/raschetnyy-ostatochnyy-risk-infitsirovaniya-pri-perelivanii-krovi
  15. Приказ Минздрава РФ от 14.09.2001 №364 (ред. от 06.06.2008) «Об утверждении Порядка медицинского обследования донора крови и ее компонентов» (Зарегистрировано в Минюсте РФ 31.10.2001 №3009) Ссылка активна на 30.05.2016. http://www.consultant.ru/document/cons_doc_LAW_78073/© КонсультантПлюс, 1992-2015
  16. Голосова Т.В., Бондаренко И.А. Трансфузионные инфекции: эпидемиология, диагностика в службе крови. Вестник службы крови России. 2007;1:16-21.
  17. Захаров В.В., Колышкин В.М., Оприщенко С.А., Русанов В.М. Вирусная безопасность донорской плазмы и лечебных препаратов крови, Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2011;4(59).
  18. Тарасенко О.А., Гукасян И.А., Соболевская Л.В., Черненко Т.В. Опыт использования метода ПЦР для выявления РНК(ДНК) возбудителей вирусных гепатитов В и С у серонегативных доноров. Трансфузиология. 2010;2. Ссылка активна на 30.05.2016. http://transfusion-web.ru
  19. Ярославцева Н.Г., Грумбкова Л.О., Туполева Т.А., Игнатова Е.Н., Сомова А.В., Гуляева А.А и др. Вирусная безопасность гемотрансфузий: обеспечивают ли ее принятые лабораторные методы выбраковки донорской крови по гепатитам В и С. Гематология и трансфузиология. 2006;2:22-26.
  20. Raimondo G, Allain JP, Brunetto MR, Buendia MA, Chen DS, ColomboM, Craxi A, Donato F, Ferrari C, Gaeta GB, GerlichWH, LevreroM, Locarnini S, Michalak T, Mondelli MU, Pawlotsky JM, Pollicino T, Prati D, Puoti M, Samuel D, Shouval D, Smedile A, Squadrito G, Trepo C, Villa E,Will H, Zanetti AR, ZoulimF. Statements from the Taormina expert meeting on occult hepatitis B virus infection. Journal of Hepatology. 2008;49:652-657. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2008.07.014
  21. Аммосов А.Д. Гепатит В. Информационно-методическое пособие. Новосибирск: «Вектор-Бест»; 2006.
  22. Рос К, Вебер М, Петерсен Д, Дростен К, Бур С, Сирайс В, и др. HBV NAT и АНТИ-HBc-тестирование повышают безопасность крови. Институт трансфузионной медицины и иммуногематологии Германского Красного Креста, реферат, Российско-немецкий научно-методический сборник, Москва — Новосибирск — Франкфурт-на-Майне, 2004:38-55. Ссылка активна на 30.05.2016. http://www.zavlab.ru/files/pdf/garantiya.pdf
  23. Seifried E, Roth WK. Возможность, эффективность и себестоимость NAT-тестирования в Германии. Вестник Службы крови России. 2004;2:47-49. Ссылка активна на 30.05.2016. http://www.fskl.ru/wp-content/uploads/2013/07/2004.pdf
  24. Roth WK. Quarantine Plasma: Quo vadis? Transfus Med Hemother. 2010;37:118-122. https://doi.org/10.1159/000314710
  25. WHO: Screening donated blood for transfusion-transmissible infections: recommendations. Geneva; 2009. Accessed May 30, 2016. Available from http://apps.who.int/iris
  26. Katz L, Strong DM, Tegtmeier G, Stramer S. Performance of an algorithm for the reentry of volunteer blood donors deferred due to false-positive test results for antibody to hepatitis B core antigen. Transfusion. 2008;48(11):2315-2322. https://doi.org/10.1111/j.1537-2995.2008.01844.x
  27. Department of Health Advisory Group on- Hepatitis: Protecting health care workers and patients from hepatitis B. Recommendations: of the Advisory Group on Hepatitis. HMSO, 1993, London. Accessed May 30, 2016. Available at: http://webarchive.nationalarchives.gov.uk/+/www.dh.gov.uk/en/Publicationsandstatistics/Lettersandcirculars/Healthserviceguidelines/DH_4084234
  28. Sato S, Ohhashi W, Ihara H, et al. Comparison of the sensitivity of NAT using pooled donor samples for HBV and that of a serologic HBsAg assay. Transfusion. 2001;41(9):1107-1113. https://doi.org/10.1046/j.1537-2995.2001.41091107.x
  29. Satake M, Taira R, Yugi H, et al. Infectivity of blood components with low hepatitis B virus DNA levels identified in a lookback program. Transfusion. 2007;47(7):1197-1205. https://doi.org/10.1111/j.1537-2995.2007.01276.x
  30. Сомова А.В, Туполева Т.А., Ярославцева Н.Г., Грумбкова Л.О., Романова Т.Ю., Голосова Т.В., Филатов Ф.П. Сравнительное изучение частоты выявления маркеров вируса гепатита В (HBV) в ИФА и ПЦР у гематологических больных. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. Прил.31. Материалы 13 Российской конференции «Гепатиты сегодня» Москва, 17-19 марта 2008:40-30.
  31. Gerlich WH. Medical virology of hepatitis B: how it began and where we are now. Virol J. 2013;10:239. https://doi.org/10.1186/1743-422X-10-239
  32. Гармаева Т.Ц., Куликов С.М., Карякин А.В., Терентьева Л.А., Туполева Т.А., Грумбкова Л.О., Ярославцева Н.Г., Сомова А.В., Филатов Ф.П., Февралева И.С., Макарик Т.В., Глинщикова О.А., Судариков А.Б., Михайлова Е.А., Савченко В.Г. Мониторирование факторов риска и индикаторов инфицированности вирусами гепатитов В и С у гематологических больных. Гематология и трансфузиология. 2006;1:23-27.
  33. Huber-Wagner S, Qvick M, Mussack T, Euler E, Kay MV, Mutschler W, Kanz K-G and Working Group on Polytrauma of the German Trauma Society (DGU). Massive blood transfusion and outcome in 1062 polytrauma patients: a prospective study based on the Trauma Registry of the German Trauma Society. VoxSanguinis. 2007;92(1):69-78. https://doi.org/10.1111/j.1423-0410.2006.00858.x
  34. Vermeulen M, Dickens C, Lelie N, Walker E, Coleman C, Keyter M, Reddy R, Crookes R, Kramvis A. Hepatitis B virus transmission by blood transfusion during 4 years of individual-donation nucleic acid testing in South Africa: estimated and observed window period risk. Transfusion. 2012;52(4):880-892. https://doi.org/10.1111/j.1537-2995.2011.03355.x

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2017 Consilium Medicum

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
 

Address of the Editorial Office:

  • Alabyan Street, 13/1, Moscow, 127055, Russian Federation

Correspondence address:

  • Alabyan Street, 13/1, Moscow, 127055, Russian Federation

Managing Editor:

  • Tel.: +7 (926) 905-41-26
  • E-mail: e.gorbacheva@ter-arkhiv.ru

 

© 2018-2021 "Consilium Medicum" Publishing house


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies