Terapevticheskii arkhivTerapevticheskii arkhivТерапевтический архив0040-36602309-5342LLC Obyedinennaya Redaktsiya33371Editorial articleПередовая статьяPrevalence ofmycelial fungi in a hematological hospitalРАСПРОСТРАНЕНИЕ МИЦЕЛИАЛЬНЫХ ГРИБОВ В ГЕМАТОЛОГИЧЕСКОМ СТАЦИОНАРЕPetrovaN AПетроваН А

ГНЦ РАМН, Москва

KlyasovaG AКлясоваГ А

ГНЦ РАМН, Москва

FunyginaL PФуныгинаЛ П

ГНЦ РАМН, Москва

ГНЦ РАМН, Москва15072003787NO7 (2003)ТОМ 78, №7 (2003)586313042020Copyright ©; 2003, Consilium MedicumCopyright ©; 2003, ООО "Консилиум Медикум"2003Consilium MedicumООО "Консилиум Медикум"https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0https://ter-arkhiv.ru/0040-3660/article/view/33371

Aim. To study prevalence, quantity and species of mycelial fungi in the air of a hematological hospital. Material and methods. Air samples in the hematological departments were taken monthly by PU- IB device in the volume 250 l/min. Seeding and identification of mycelial fungi were made on the Chapeck medium. Results. Tests for mycelial fungi in the air was 95%. Dominating species were the following: Penicillium spp., Cladosporium spp., Aspergillus spp. The fungal contamination was seasonal. Maximal isolation of Penicillium spp was seen in winter and autumn. Aspergillus spp. is represented with 13 species of which most frequent were A.versicolor, A. niger, A. fumigatus, A. ochraceus, A. flavus. Pathological material from 19 patients contained Aspergillus spp.: A. fumigatus, A. flavus, A. niger. The isolation peak was in autumn-winter and coincided with maximal isolation of fungal spores from the air. The analysis of air samples taken in the wards where patients had Aspergillus spp. In biomaterials showed that concentration of spores Aspergillus spp. was higher than in nearby wards and corridor: 45.6 CPU/M3 vs 18.8 CFU/m3 and 24.7 CFU/M3, respectively. However, morphologically identical strains (patient-air) were recognized only in 4 cases from the nearby wards and corridor. None of the air samples taken in the ward of the patient contained identical species. Minimal amount of the spores of micromycetes was registered in the wards furnished with ventilation with laminar airflow. Most contaminated was the air of 4 bed wards in the old building. Conclusion. Mycological monitoring of the air in hematological departments determined the structure of mycelial fungi complexes. Though ambient air in the wards is full of fungi, detection of morphologically identical strains causing invasive mycosis in immunocompromised patients is rare. Further studies are necessary.

Цель исследования. Изучить распространение, количественное содержание и видовой спектр мицелиалъных грибов в воздухе гематологического стационара. Материалы и методы. Пробы воздуха отбирали ежемесячно в гематологических отделениях центра пробоотборным устройством "ПУ-1Б" в объеме 250 л/мин. Посев и идентификацию мицелиалъных грибов осуществляли на среде Чапека. Результаты. Частота выявления мицелиалъных грибов из воздуха стационара составила 95%. Доминирующими родами в структуре грибных комплексов были Penicillium spp., Cladosporium spp., Aspergillus spp. Выявление их носило сезонный характер. Максимальное выделение Penicillium spp. отмечено в зимний и весенний периоды. Темноокрашенные грибы, представленные в основном родом Cladosporium spp., преобладали в летние месяцы. Повышенное содержание Aspergillus spp. наблюдалось осенью и зимой. Видовой спектр Aspergillus spp. в воз- духе стационара представлен 13 видами, наиболее распространенными из них были 5: A. versicolor, A. niger, A. fumigatus, A. ochraceus, A. flavus. В течение анализируемого периода у 19 пациентов в посевах патологического материала были выявлены Aspergillus spp.: A. fumigatus, A. flavus, A. niger. Пик выявления Aspergillus spp. из патологического материала пришелся на осенне-зимний период и совпал с максимумом выделения спор грибов этого рода из воздуха. При анализе образцов воздуха, взятых в палатах больных, у которых выявлялись Aspergillus spp. из биоматериалов, концентрация спор Aspergillus spp. была выше, чем в соседних палатах и коридоре: 45,6 колониеобразующих единиц (КОЕ) на 1 м3 против 18,8 КОЕ/м3 и 24,7 КОЕ/м3 соответственно. Однако морфологически идентичные штаммы ("больной-воздух") были выявлены лишь в 4 случаях из воздуха соседних палат и коридора. Ни в одном образце воздуха, взятом в палате больного, не удалось обнаружить идентичных видов. Минимальное содержание спор микромицетов было выявлено в палатах, оснащенных системой вентиляции с ламинарным потоком воздуха. Наиболее "заспоренным" был воздух 4-местных палат, расположенных в "старом" здании. Заключение. В результате микологического мониторинга воздуха в отделениях ГНЦ РАМН определена структура комплексов мицелиальных грибов. Несмотря на широкое обнаружение мицелиальных грибов в окружающей среде выявить морфологически идентичные штаммы, вызвавшие инвазивный микоз у иммуноскомпрометированных больных, удается крайне редко. Необходимо проведение дальнейших исследований в этой области

micromycelial complexmycelial fungiair samplesAspergillus spp.aspergillesisAspergillus spp.комплекс микромицетовплесневые грибыобразцы воздухаacпергиллезSingh N. Trends in the epidemiology of opportunistic fungal infections: Predisposing factors and the impact of antimicrobial use practices. Clin. Infect. Dis. 2002; 33: 1692-1696.Morris G., Kokki M. H., Richardson M. D. Sampling of aspergillus spores in the air. Glasgow. 2000.Munos P., Burillo A., Bouza E. Environmental surveillance and other control measures in the prevention of nosocomial fungal infections. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2001; 7: 38-45.Anaissie E. J., Stratton S. L., Dignani С. et al. Pathogenic aspergillus species recovered from A hospital water system: A 3- year prospective study. Clin. Infect. Dis. 2002; 34: 780-789.Anaissie E. J., Kuchar R. Т., Rex J. H. et al. Fusariosis associated with pathogenic fusarium species colonization of a hospital water system: A new paradigm for the epidemiology of opportunistic mold infections. Ibid. 33: 1871 - 1878.Revancar S. G., Patterson J., Sutton D. et al. Disseminated phaephymycosis: Review of an emerging mycosis. Ibid. 34: 467-476.Nucci M., Akiti Т., Barreiros G. et al. Nosocomial outbrek of exophiala jenselmei fungemia associated with contamination of hospital water. Ibid. 1475-1480.Hoog G. S., Guarro J., Gene J., Figueras M. J. Atlas of clinical fungi. 2-nd ed. Spain. 2000. 39.Fridkin S. K., Jarvis W. R. Epidemiology of nosocomial fungal infections. Clin. Microbiol. Rev. 1996; 9(6): 499-511.Bouakline A., Lacroix C., Roux N. et al. Fungal contamination of food distributed to neutropenic patients. In: 39-th Interscience conference on antimicrobial agents and chemotherapy. Sanfrancisco 1999. 560.Jarv H., Naaber P., Koljalg S. et al. Surveillance of Aspergillus spp. air contamination in a hematology and transplant department. Clin. Microbiol. Infect. 2001; 7 (suppl. 1): 394, abstr. 696.Panagopoulou P., Filioti I., Farmaki E. et al. Environmental surveillance for filamentous in a tertiary care hospital. Ibid. 394.Марфенина О. Е., Кулько Ф. Б., Иванова А. Е., Согонов М. В. Микроскопические грибы во внешней среде города. Микол. и фитопатол. 2002; 4: 22-32.Жданова Я. Н., Васильева А. И. Меланинсодержащие грибы в экстремальных условиях. Киев: Наукова думка; 1988.Cimon В., Zouhair R., Sytnoens F. et al. Aspergillus terreus in a cystic fibrosis clinic: environmental distribution and patient colonization pattern. J. Hosp. Infect. 2002; 10: 81-82.Perfect J. R., Cox G. M., Lee С. A. et al. The impact of isolation of aspergillus species: A hospital-based survey of aspergillosis. Clin. Infect. Dis. 2002; 33: 1824-1833.Ильина В. Я., Богомолова Т. С., Чилина Г. А. Микроэкология больничных помещений. В кн.: I Съезд микологов России: Тезисы докладов. М. 2002. 54.Latge J. P. Aspergillus fumigatus and aspergillosis. Clin. Microbiol. Rev. 1999; 12: 310-350.Anaissie E. J., Stratton S. L., Summerbell R. C. et al. Aspergillus species in hospitals: Showering as a potential mode of exposure. In: 39-th Interscience conference on antimicrobial agents and chemotherapy. Sanfrancisco. 1999. 578, abstr. 1908.